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1、目 录目录2摘要3Abstract4前言51.1 硒在动物体的吸收、分布、代51.2 硒对机体免疫功能的影响51.3 硒缺乏与氧化应激51.4硒缺乏与NO 代71.5 试验的目的和意义72 材料与方法92.1 实验动物与药品器械92.3 主要试剂盒92.4实验的总体设计92.5 样品的采集与处理92.6检测方法92.7 数据分析及统计93 试验结果93.1 临床病症观察结果93.2 病理学检查结果103.3 胸腺脏器系数的检测结果103.4 硒缺乏对鸡胸腺及全血中硒含量影响的检测结果103.5 硒缺乏对鸡胸腺及血清GSH-P*活性影响的检测结果103.6 硒缺乏对鸡胸腺及血清SOD活性影响的检
2、测结果113.7 硒缺乏对鸡胸腺及血清 MDA 含量影响的检测结果114 讨论114.1硒缺乏动物模型的建立114.2 硒缺乏对鸡胸腺形态构造的影响114.3硒缺乏对鸡胸腺及血清抗氧化功能的影响125 结论13参考文献14致15硒缺乏对鸡胸腺GSH-P*、SOD和MDA的影响摘 要硒作为鸡胸腺必需的微量元素，是胸腺自由基的去除剂，与其他抗氧化物质共同构成机胸腺抗氧化防御系统，以维持胸腺自由基动态平衡。世界上许多国家都存在严重的缺硒地区，而我国又是严重缺硒国家之一。硒缺乏症是一种危害多种鸡的世界性疾病，大量研究发现，鸡缺硒可以引起鸡渗出性素质、胸腺纤维变性和白肌病，猪桑椹心病、肝坏死以及牛、羊肌
3、肉营养不良等各种疾病，给养殖业造成巨大的经济损失。本试验以硒含量为0.032mg/kg 的日粮饲喂鸡复制硒缺乏鸡模型，分别于30、45、60及75日龄剖杀采样，通过对鸡胸腺的病理学观察，脏器系数测定、血清及胸腺谷胱甘肽过氧化物酶GSH-P*、超过氧化物歧化酶SOD和丙二醛MDA的检测，研究硒缺乏致鸡胸腺抗氧化能力的影响，为硒缺乏病的诊断和治疗提供科学的理论根底。关键词：硒缺乏；鸡；胸腺；抗氧化The effect of selenium deficiency on the thymus MDA, SOD and GSH-P* in chickenAbstractSelenium as anim
4、al body essential trace elements is scavenger of free radicals, and other antio*idant substances together constitute the bodys antio*idant defense system, in order to maintain the bodys free radical homeostasis. In many countries in the world, there is a serious shortage of selenium, while China is
5、one of the serious shortage of selenium. Selenium deficiency is a kind of harm in a variety of animal disease worldwide, a large number of studies have found that animals lack of selenium can cause the e*udation of chicken quality, pancreatic fibrosis and white myopathy, pig mulberry heart disease,
6、liver necrosis and cattle, sheep muscle malnutrition diseases and to the aquaculture industry caused huge economic losses. In this e*periment, the content of selenium was 0.032 mg / kg of diets were fed to chickens copying selenium deficient animal model, respectively in 30, 45, 60 and 75 days of ag
7、e section kill sampling, by chicken thymus was observed initially revealed the selenium deficiency induced suppression of chicken immune mechanism, selenium lack of diagnosis and treatment of disease to provide scientific theoretical basis, to provide a reference for the parative medicine.Key words:
8、Chicken thymus; selenium deficiency; SOD; MDA; GSH-P*;前 言硒作为动物机体必需的微量元素，是机体自由基的去除剂徐辉碧等，1987；胡松洲等1987，它与其它抗氧化物质共同构成机体抗氧化防御系统，维持体自由基动态平衡，使组织细胞中的不饱和脂肪酸及其它脂类不被氧化。自然界中的硒通过食物链由土壤到植物，再到动物，因此动物体的硒含量密切地依赖于动物所采食饲料中的硒含量。世界上许多国家都存在严重的缺硒地区，而我国又是严重的缺硒国家之一，因此硒缺乏症作为一种危害多种动物的世界性疾病，给我国养殖业带来巨大的经济损失。硒缺乏会引起机体含硒酶等抗氧化酶活性的
9、降低，导致自由基去除受阻、分泌紊乱、机体免疫力下降等一系列机体功能障碍，进而导致疾病的发生Dunbar，et al，1993。近年来硒缺乏对动物机体影响的研究已成为国外研究的焦点和热点。1.1 硒在动物体的吸收、分布、代动物机体所有组织和细胞中都含有硒，含量视组织和摄食硒水平而异。进入机体的硒主要在十二指肠吸收，胃和大肠几乎不吸收，但是吸收因饲料中的硒含量、存在形式及干扰元素的种类和水平而异，一般有机硒的生物利用率大于无机硒，植物性饲料硒的生物利用率大于动物性饲料巧娥等，2001。硒被动物机体吸收后首先进入血液，大局部与血浆白蛋白结合，小局部与球蛋白形成不结实结合，并有局部进入红细胞，然后由血
10、液转运到全身各个组织和器官。在日粮硒含量正常的情况下，机体组织中的硒含量分布按肾、肝、胰、脾、心、骨、肌肉、脂肪顺序，依次递减辉等，2003。肝有贮蓄过量硒的功能，当体缺硒时肝中的硒向全身输送。在正常情况下，动物体的硒主要通过尿和粪便等途径排泄。当采用注射或饲喂高硒物质时，将产生大量挥发性甲基化硒代产物二甲基硒化合物，后者主要是通过肺呼出毛胜勇，2000。1.2 硒对机体免疫功能的影响机体发挥正常免疫功能需要有一定水平硒的参与新等，2001。缺硒可影响免疫系统的发育和功能，适量补充硒，可提高T、B 淋巴细胞、NK细胞和吞噬细胞等免疫细胞活性，增强机体非特异性免疫及细胞免疫、体液免疫功能Marg
11、aet，2000；王栋钢等，2003；静，2006。但是补硒要适量，超过平安摄入量则会引起硒中毒。 1.3硒缺乏与氧化应激动物机体在代过程中，将不断产生自由基如超氧自由基和过氧化物如H2O2等各种对机体有害的物质，这些物质过量极易将机体生物膜过氧化为脂质过氧化物，破坏膜构造，并造成组织细胞严重损伤。抗氧化防御系统是动物机体在进化过程中形成的一套完整而复杂的防御系统，它包括抗氧化酶如SOD、GSH-P*、CAT等、脂溶性的抗氧化剂如维生素E、辅酶Q等、水溶性小分子抗氧化剂GSH、维生素C等以及蛋白性抗氧化剂铜蓝蛋白、金属硫蛋白等等，这些抗氧化物质在机体去除自由基，防止各种病理变化的发生开展中发挥
12、重要作用瑗，2004；荣梁，2007。 硒在体主要以有机硒化合物形式存在，分两类：一类是含硒氨基酸，一类是含硒蛋白质。一般将以硒代半胱氨酸形式将硒共价结合到多肽链的蛋白质称硒蛋白，目前发现的硒蛋白大多是重要的功能酶，如GSH-P*，硫氧还蛋白复原酶TR、碘甲腺原氨酸脱碘酶ID等。GSH-P* 家族是体最强的抗氧化酶，硒是以半胱氨酸的形式位于其活性中心上Arthur，2000。普遍认为硒主要通过硒蛋白GSH-P*发挥其抗氧化作用，保护机体免受氧化损伤。硒蛋白GSH-P*的抗氧化作用包括分解脂质过氧化物、去除脂质过氧化自由基中间产物、修复自由基引起的巯基化合物的分子损伤、在自由基破坏生命物质之前将
13、其去除或转化为稳定化合物和催化巯基化合物作为保护剂的反响，从而维持生物膜系统的完整性华注等，1987；徐辉碧等，1991。GSH-P*与缺硒引起的病变呈正相关，硒缺乏时GSH-P*的活性快速降低，在硒的恢复过程中，GSH-P*活性的升高需要更大剂量的硒和更长的时间，因此可以通过测定GSH-P*的活性来判断缺硒和缺硒性疾病。目前已发现了四种依赖于硒的GSH-P*，分别命名为GSHP*-1、GSHP*-2、GSHP*-3和GSHP*-4。GSHP*-1是细胞的 GSH-P*，是大鼠体数量最多的一种硒蛋白，几乎存在于所有的细胞中，它以复原型谷胱甘肽GSH为底物，催化复原不同种类的氢过氧化物，从而去除
14、组织中有害的氢过氧化物和自由基，对保护生物膜构造和功能的完整发挥重要的作用。GSHP*-2位于胃肠道，是一种细胞酶，它能很专一地保护食物免受 H2O2的损害，这种酶在阻止胃肠道癌症进展性变化中，显得特别重要Wingler，et al，1999。GSHP*-3是细胞外或血浆GSH-P*，主要由肾脏分泌，但肝和乳腺也可产生，它可复原酯化的氢过氧化物和游离的氢过氧化物，细胞外GSH-P*以控制细胞外氢过氧化物来协助细胞的GSH-P*来发挥作用。GSHP*-4也称为磷脂氢过氧化物谷胱甘肽过氧化物酶PHGP*，是一种膜结合蛋白，具有界面性，能作用于膜和水之间的界面，对磷脂氢过氧化物的活性较高，对保护生物
15、膜的完整性具有重要意义。GSHP*-4存在于许多组织中，其中以睾丸中的含量最丰富，它位于膜而不在胞浆Roveri，1994，此酶被认为在预防脂质过氧化中起主要作用，因为它是能复原磷脂中脂肪酸氢过氧化物唯一的细胞GSH-P*。Ursini1999研究发现在成熟精子尾部中段，线粒体被囊物质中至少50%是GSHP*-4。基于这些发现，推测硒蛋白GSHP*-4在精子成熟过程中具有双重作用，即在精子发育早期，GSHP*-4以酶的活性形式存在发挥抗氧化功能，而在成熟精子中该蛋白物理特性和生物学作用均有所改变，以无活性的、不可溶的蛋白质形式持续存在倪银星，2002；高建忠，2004。 大量研究说明，给动物补
16、充适量的硒制剂可提高机体抗氧化酶的活性，进而提高机体抗氧化能力。许飞利2007研究发现饲料中添加硒可以显著提高鸡血清中GSH-P*和SOD的活性，且两种酶的活性都随着日粮中硒添加量的上升而增加。胥保华等2005研究说明饲料中亚硒酸钠添加浓度在0.200.4 mg/kg时GSH-P*的活性最正确。甘璐等2003研究了不同剂量的硒对大鼠肝脏抗氧化功能的影响，结果发现补硒20 g/kg的大鼠，机体反映脂质过氧化水平的MDA含量降低，同时 SOD、CAT和GSH-P*活性增高，说明硒通过提高机体抗氧化酶的活性有效抑制大鼠肝脏的脂质过氧化。英子等2005研究发现，有机硒能够通过提高GSH-P*的活性而降
17、低由CCl4诱导的小鼠肝脏脂质过氧化损伤的发生。传福2008研究说明日粮中不同的硒含量对草鱼肝胰脏和血清抗氧化酶活性及MDA含量和T-AOC有显著影响P0.05，硒含量为0.66 mg/kg时，可显著提高草鱼血清和肝胰脏CAT、GSH-P* 活性及T-AOC，降低血清和肝胰脏MDA浓度，草鱼肝胰脏和血清中的抗氧化酶系统总体到达相对平衡，有效地抵抗氧化损伤。章子贵等2005研究说明低硒能引起机体抗氧化酶系的紊乱及氧化损伤，从而影响免疫系统。丹英等2008研究了低硒、低碘对大鼠肝脏*些生化指标的影响，结果显示低硒组大鼠肝脏中GSH-P* 活性明显降低，MDA、NO含量明显升高。当机体硒含量或GSH
18、-P*活性降低时，都将会导致淋巴细胞代过程中脂质过氧化物作用的相对增强，过多的过氧化物扩散到细胞的各个部位，扰乱各种酶的正常生化功能，引起各种生物膜的损伤，最终导致机体的细胞免疫和体液免疫等免疫防御体系的损伤及免疫功能的降低Brown，et al，2000。Tapiero等2003和 Lewin等2001也证实了硒缺乏可影响机体的抗氧化能力，导致氧化应激的发生。以上研究说明，低硒能扰乱机体抗氧化防御系统的平衡，导致机体氧化应激，引起免疫抑制和机体损伤。1.4硒缺乏与NO 代自由基是体正常的代产物，对维持机体正常的生理功能具有重要意义。其中，NO是较为重要的自由基，它作为一种生物信使分子和细胞毒
19、效应因子近年来引起极大的关注。NO是在辅酶NADPH、钙调蛋白、血红素等辅助因子的作用下，由一氧化氮合酶NOS以 L-精氨酸L-Arg和氧分子为底物，催化L-Arg产生的武瑞，2001。生理条件下，动物体的NO维持动态平衡，参与机体的新代和贮能，参与细胞的解毒功能等，但是高浓度的NO具有细胞毒性作用，可以与超氧阴离子结合生成过氧亚硝酸根ONOO- ，ONOO-及其分解产物可引起膜的脂质过氧化，导致细胞膜构造和功能的破坏，同时还通过抑制DNA合成及线粒体呼吸等途径引起组织损伤艳淑等，2000。 研究说明硒可干扰细胞NO的代。许龙兵等2005研究说明，富硒乳酸菌可以抑制镉诱发小鼠血浆中NO含量的升
20、高和TNF-的释放，从而缓解镉对组织的损伤作用。洪进等2006研究结果显示富硒酵母可显著降低肝癌大鼠血浆和肝组织的NO含量和NOS活性显著，全血和肝组织中GSH-P*升高，说明富硒酵母能提高抗氧化酶的活性，抑制NO的产生，去除体大量过剩的氧自由基，从而减轻NO等自由基所致的脂质过氧化损伤。低硒也可引起NO含量的变化。庄惠君等2004通过复制硒缺乏动物模型来检测富硒蘑菇对小鼠睾丸脂质过氧化和精子活力的影响，测定了睾丸中硒、MDA和NO含量，GSH-P*和NOS活性，结果说明，富硒蘑菇具有提高含硒酶GSH-P*活性，降低NOS活性和NO含量，从而减轻自由基对睾丸损伤作用。金明昌2007在研究幼鲤硒
21、缺乏症及其机制和硒需要量时发现硒缺乏可导致幼鲤血清和肝脏中NOS活性增强，NO含量升高。仝宗喜2004研究显示硒缺乏可引起鸡胸腺和血清NO代发生改变。1.5试验的目的和意义硒作为鸡必需的一种微量元素，对鸡生长、发育、繁殖等方面都起着极为重要的作用。硒缺乏会引起机体抗氧化能力降低，导致自由基去除受阻、分泌紊乱、机体免疫能力下降等一系列机体功能障碍，进而导致疾病的发生。世界上许多国家都存在严重的缺硒地区，而我国又是缺硒严重国家之一，缺硒病在个别区域仍时有发生，因此对硒的研究显得至关重要。目前国外学者对畜禽硒缺乏症在流行病学、致病原因、临床病症、剖检变化、发病机理等方面进展了大量的研究，但是硒缺乏致
22、鸡免疫抑制的机制研究较少。 本试验通过给雏鸡饲喂自配的低硒饲料复制硒缺乏鸡模型，检测鸡胸腺在提醒硒缺乏致鸡GSH-P*、SOD和MDA的影响，为硒缺乏病的诊断和治疗提供科学的理论根底，为比拟医学提供借鉴。 实验局部2 材料与方法2.1 实验动物与药品器械1日龄安康海蓝褐雏鸡200 只，购自医学院鸡场。亚硒酸钠、刀片、镊子、显微镜、2.5%戊二醛磷酸盐缓冲液、10%福尔马林磷酸盐缓冲液、组织切片机、Forma-70C 超低温冰箱、H-7650 透射电子显微镜、70%乙醇、TGL-16G-C 型高速离心机。2.3 主要试剂盒GSH-P*活性测定试剂盒、SOD活性测定试剂盒、MDA含量测定试剂盒购自
23、建成生物研究所。2.4实验的总体设计选择1日龄安康海蓝褐雏鸡200只，随机分为对照组和缺硒组，各100只。缺硒组鸡饲喂自配的低硒饲料，经测定饲料中的硒含量为0.032 mg/kg，对照组鸡饲料根据生产标准在低硒饲料根底上添加亚硒酸钠使饲料中的硒含量为0.282mg/kg。整个试验期间，各组鸡均自由采食和饮水，常规免疫。分别于30、45、60 及75日龄每组随机选取20只剖杀取样。2.5样品的采集与处理鸡剖杀后，用预冷的刀片、镊子等迅速采取大小为1.0mm1.0mm0.5mm的脾脏组织块，固定于pH 值为7.2的2.5%戊二醛磷酸盐缓冲液中，4下保存，用于超微构造观察；采取5mm5mm3mm 胸
24、腺组织块固定于10%福尔马林磷酸盐缓冲液中，用于病理组织学检查；取0.5g各组织，快速冰浴匀浆用于GSH-P*、SOD和MDA的检测。2.6检测方法2.6.1临床病症的检查常规饲养，自由采食和饮水，定期称重，认真观察并做好记录，收集硒缺乏症鸡的临床病症。2.6.2病理学的检查2.6.2.1 眼观变化常规剖检观察各脏器病理变化，称量各免疫器官并记录，按照以下公式计算脏器系数：脏器系数=组织重g体重kg2.6.2.2 病理组织学观察将固定在福尔马林中用于光镜检查的组织块按常规方法制作病理石蜡切片，HE染色，在显微镜下观察，照相并记录试验结果。2.7 数据分析及统计数据采用E*cel 2007统计记
25、录试验数据，应用SAS for Windouws 6.12软件进展方差分析，比拟个两试验组差异显著性，试验结果以均数标准差表示。3 试验结果3.1 临床病症观察结果整个试验期，对照组鸡临床病症和生长发育表现正常。缺硒组鸡开场精神沉郁，食欲减退，饮欲增加，羽毛蓬乱无光泽。45d时冠、喙及肉髯颜色变淡，在躯体较低垂部位的胸腹、腿侧、颈、翼皮下出现淡绿色或青色水肿，皮下穿刺可看到淡黄或淡黄绿色胶冻样液体；70d时精神高度沉郁，缩颈，闭眼，食欲废绝，站立困难，排出绿、褐或是乳白色粪便，脱水并且严重消瘦。3.2 病理学检查结果3.2.1 病理剖检结果对照组鸡表现正常。缺硒组鸡有的在胸部皮下呈淡青色或绿色
26、外观水肿，切开皮肤，皮下有淡绿色或淡黄绿色胶冻样液体。皮下及胸部肌肉、大腿肌肉有不同程度的出血点，肌肉颜色变淡，并呈水肿样外观；胰腺体积缩小有坚实感；心包液增多，心肌色淡，心包腔扩并充满浆液；胸腺、脾脏、法氏囊体积缩小，胸腺有出血点。3.2.2病理组织学观察结果对照组鸡胸腺淋巴细胞形状、细胞核、细胞质、线粒体、质网等细胞器构造完整，缺硒组鸡胸腺淋巴细胞的超微构造发生改变，具体表现为胸腺淋巴细胞核膜破裂，染色质边聚、浓缩，形成环状核或碎裂成团块状或呈新月形贴附于核膜下，核仁消失，核中央电子密度降低，线粒体肿胀，嵴断裂，局部嵴溶解甚至消失，质网肿胀，排列紊乱，网池增宽，融合成空泡状，呈凋亡性变化；
27、缺硒组胸腺细胞解离，细胞膜皱褶、破裂或消失，核溶解，核周边形成环状周隙，胞质细胞器明显减少，电子密度降低。3.3 胸腺脏器系数的检测结果由表1和图1可知，缺硒组胸腺的脏器系数与对照组比拟均有不同程度的降低，差异均显著 P0.05或极显著 P0.01。表1 胸腺脏器系数测定结果组别30d45d60d75d对照组0.3290.038Cc0.3120.018CDc0.2680.028DEd0.5220.011Aa缺硒组0.2720.026DEd0.2510.028EFd0.2130.032Fe0.4030.030Bb3.4 硒缺乏对鸡胸腺及全血中硒含量影响的检测结果由表2 和图2可知，缺硒组胸腺和全
28、血中的硒含量随试验期的延长呈下降趋势，与同一时间点对照组比拟差异均显著 P0.05或极显著 P0.01。表2 硒缺乏对鸡胸腺及血清中硒含量影响的检测结果组别30d45d60d75d全血对照组0.2670.019Aa0.2480.018Aa0.2550.054Aa0.2870.036Aa缺硒组0.1990.031 Ab0.1530.020ABc0.0930.022Dd0.0490.012De胸腺对照组0.2610.020Ab0.2840.017Aa0.2790.019Aab0.2670.015Aab缺硒组0.1480. 013 Bc0.1230.012Bd0.0880.006Ce0.0570.0
29、05Df3.5 硒缺乏对鸡胸腺及血清GSH-P*活性影响的检测结果由表3和图3可知， 缺硒组胸腺及血清中GSH-P*活性随试验期的延长呈下降趋势。与同一时间点对照组比拟，差异均显著P0.05或极显著P0.01。表 3硒缺乏对鸡胸腺及血清GSH-P*活性影响的检测结果组别30d45d60d75d全血对照组381.045.58 CBb403.2016.37ABa412.9313.36Aa01.6514.21 ABa缺硒组361.2716.19Cc333.0015.43 Dd310.7913.93 De270.879.65Ef胸腺对照组40.081.93Bb43.4422.88ABa45.452.7
30、1Aa40.412.51Bb缺硒组33.821.55Cc30.671.16 Cd45.452.71Aa17.742.11 Ef3.6 硒缺乏对鸡胸腺及血清SOD活性影响的检测结果由表4和图4可知，缺硒组免疫器官及血清中 SOD 活性随试验期的延长呈下降趋势。与同一时间点对照组比拟，差异均显著P0.05或极显著P0.01。表4 硒缺乏对鸡胸腺及血清SOD活性影响的检测结果组别30d45d60d75d全血对照组130.390.75Bd136.837.34Ac146.864.59Ab153.571.60Aa缺硒组113.561.37Ce103.413.72Df90.813.38Eg77.941.63
31、 Fh胸腺对照组129.709.44Aa134.5410.66Aa133.962.61Aa135.576.97Aa缺硒组112.959.77Bb108.636.67Bb88.924.20 Cc80.776.12Cc3.7 硒缺乏对鸡胸腺及血清 MDA 含量影响的检测结果由表5和图5可知， 缺硒组免疫器官及血清中MDA含量随试验期的延长呈上升趋势。与同一时间点对照组比拟，差异均显著P0.05或极显著P0.01。表5硒缺乏对鸡免疫器官及血清 MDA 含量影响的检测结果组别30d45d60d75d全血对照组2.1600.304Ee3.1950.506Aa3.2730.296Aa3.0980.291A
32、a缺硒组5.3100.553 Bb5.7320.386Bb7.1690.598Cc8.5100.224Dd胸腺对照组0.8060.163 Dd0.8680.088Dd0.8230.065Dd0.7720.066Dd缺硒组0.8860.101Dd1.1370.159Cc1.6830.132Bb2.0100.116Aa4 讨论4.1硒缺乏动物模型的建立整个试验期，对照组鸡表现正常，缺硒组鸡15 d 时羽毛蓬乱无光泽、食欲减退、生长缓慢；45 d 时冠、喙及肉髯颜色逐渐变淡，在躯体较低垂部位的胸腹、腿侧、颈、翼皮下出现淡绿色或青色水肿，皮下穿刺可看到淡黄或淡黄绿色胶冻样液体；70 d 时精神高度沉郁
33、，缩颈，闭眼，食欲废绝，病鸡曲爪，行走困难，排出绿、褐或是乳白色粪便，脱水并且严重消瘦闭眼。缺硒组鸡剖检可见肌营养不良和胰腺萎缩。以上病症与以往报道的硒缺乏动物的临床病症根本一样仝宗喜，2004；徐娟美，2005；徐海梅，2006，说明硒缺乏动物模型复制成功。鸡免疫器官和全血硒含量测定结果说明，缺硒组鸡免疫器官及血清中的硒含量随试验期延长呈下降趋势，明显低于对照组，且随组织及血清中硒含量的降低，硒缺乏病症逐渐明显，进一步证实硒缺乏动物模型复制成功。4.2 硒缺乏对鸡胸腺形态构造的影响脏器系数又称脏体比，是动物*脏器的重量与其体重之比值。正常时各脏器与体重的比值比拟恒定。脏器系数增大，表示脏器充
34、血、水肿或增生肥大等；脏器系数减小，表示脏器萎缩及其它退行性改变。因此免疫器官脏器系数可作为评价禽类免疫状况的良好指标。本实验结果显示，胸腺的脏器系数随试验期的延长和组织中硒含量减少，脏器系数明显减小，说明硒缺乏对鸡胸腺的损伤程度逐渐加重。与石军2002和素玲2004的报道根本一致，说明硒缺乏可以引起免疫器官形态构造发生改变，进而影响免疫器官发育。4.3硒缺乏对鸡胸腺及血清抗氧化功能的影响GSH-P*主要存在于真核细胞胞浆里，在线粒体里也发现有此种酶，它通过特异性的催化GSH 为氧化型谷胱甘肽GSSH而实现对氢过氧化脂LOOH和H2O2的分解，并可以去除由ROS 和OH诱发的脂质过氧化物，保护
35、细胞膜构造和功能的完整性。硒是GSH-P*的活性成分，因此通常将GSH-P*的活性作为衡量机体硒水平的一项重要指标。SOD 可以去除O2-而保护机体细胞免受损伤，其活力的上下间接反映了机体去除氧自由基的能力。先英等2004认为，硒与SOD活性有密切的关系，但不是单纯的递增和递减关系，只有当硒在适当的浓度围，SOD活性才可到达最高。低浓度硒对SOD活性起激活效应，高浓度硒对SOD活性起抑制作用。MDA是自由基攻击生物膜中的多不饱和脂肪酸，引发脂质过氧化作用形成的脂质过氧化物，因而其含量的上下常可反映机体脂质过氧化的程度，间接反映细胞受损程度克然等2000。大量研究说明，给动物补充适量的硒制剂可提
36、高机体抗氧化酶的活性，提高机体抗氧化能力。宣海等1999报道，给大鼠补充适量硒0.2 mg/kg能提高红细胞中GSH-P*活性和肝及血清中SOD的活性，同时降低血清中MDA含量。何宏超等2009研究了不同硒源对生长肥育猪生产性能的影响，结果显示饲料中添加硒酵母，在一定程度上提高了血清和肌肉GSH-P*的活力，降低了MDA的含量。硒缺乏时，由于体抗氧化酶系的紊乱而导致脂质过氧化产物蓄积，对机体产生氧化损伤，从而影响免疫功能Saito et al，2003；贾奎寿，2002。舸2005研究显示长期低硒、低硒联合低碘会极大降低发育期仔鼠肝脏和全血中GSH-P*活性，其损害在母体就已经发生，子代较亲代
37、损伤更严重，还可降低发育期仔鼠脑GSH-P*和SOD活性，从而破坏脑抗氧化酶系统。金明昌2007研究显示，日粮中硒缺乏可引起幼鲤血清GSH-P*和SOD活力降低，MDA含量升高，且日粮中硒添加水平越低，血清GSH-P*和SOD活力降低越明显，MDA含量则越高。仝宗喜2004研究说明硒缺乏可导致雏鸡组织器官中T-AOC下降，GSH-P*活性降低，MDA含量升高，使机体处于氧化应激状态，导致免疫细胞的膜系统受到损伤，免疫细胞构造和功能受到损害，造成机体免疫功能下降。低硒还可以导致红细胞膜上GSH-P*、SOD 和CAT 活力的降低超，2002。本试验结果显示硒缺乏可影响胸腺GSH-P*、SOD活性
38、和MDA含量，随着试验期的延长GSH-P* 和SOD 活性下降，MDA 含量增加，并呈现明显的时间-效应关系。说明硒缺乏引起动物机体抗氧化能力的降低，机体发生了脂质过氧化，从而导致组织器官受损，证实了硒缺乏可导致鸡免疫器官的氧化应激。5 结论本课题以海兰褐鸡为试验对象，饲喂自配的低硒日粮，复制硒缺乏动物模型，通过对胸腺及血清的抗氧化功能的检测，结论如下：硒缺乏可引起鸡胸腺显微构造变化和脏器系数降低。硒缺乏可引起鸡胸腺及血清GSH-P* 和SOD 活性下降，MDA 含量增加。参考文献1 包兴吕.2000.肿瘤坏死因子与脑缺血J.现代安康，10：4.2 瑗，周 玫主编.2004.自由基与衰老M.：
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