一人类外周血染色体标本制备一ppt课件.ppt

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1、实验一 人类外周血染色体标本制备 一、实验目的 初步掌握人类染色体标本培养和制备的基本方法。 二、实验原理 正常情况下,外周血中的小淋巴细胞,几乎都处在G1期或G0期,外周血细胞中是没有分裂相的。1960年发现外周血中的小淋巴细胞可以在植物血凝素(phytohaemagglutinin, PHA)分裂刺激剂的影响下,在形态上转变为淋巴母细胞,进行有丝分裂。这样经过短期培养,秋水仙素的处理,低渗和固定,就可以迅速而又简便地获得体外生长的细胞群体和有丝分裂相。本方法已为临床医学、病毒学、药理学、遗传毒理学等方面广泛应用。,三、实验步骤 、采血 (已完成) 、培养(lymphocytes cell

2、culture) (已完成) RPMI1640培养液,370.5恒温中培养72小时。 3、秋水仙素(colchicine)处理 在终止培养前-小时,加入秋水仙素。 (已完成) 4、离心 (centrifugalization ) 以1000rpm离心10分钟,弃上清,留沉淀并用吸管打匀。,、低渗处理(hypotonic treatment) 加毫升预温(37)的0.075M KCl低渗液(hypotonic solution),用吸管打匀使细胞 悬浮于低渗液中,37水浴箱静止2530分钟。,6、预固定(pre-fixation) 低渗后,加新配的固定剂(甲醇冰醋酸= 31 )毫升,打匀。,7、

3、再离心 1000rpm离心10分钟,弃上清液,留沉淀。,、固定 (fixation) 加入固定液(甲醇冰醋酸 = 31)5ml,将沉淀打匀,固定20分钟。 、再离心 1000rpm离心10分钟,弃上清液,留沉淀。 10、再固定: 加入固定液(甲醇冰醋酸 = 13),固定 20分钟。,11、再离心 1000转/分离心10分钟,弃去上清液,留沉淀。 12、再固定 加入固定液(甲醇冰醋酸 = 11)打匀,固定 20分钟。 13、制片 固定后,1000rpm离心10分钟,留下0.2ml沉淀物,吸取细胞悬液滴在已用冰水浸泡的洁净载玻片上,立即用嘴吹散,在洒精灯焰上通过几次,使细胞平铺于载玻片上,空气干燥

4、(dir drying)。,14、染色( Giemsa staining) Giemsa染液染色分钟,玻片用自来水冲洗,晾干。 15、镜检(microscopic examination),四、试剂和药品 1、 培养液的配制 RPMI1640培养基(含L-谷氨酰胺和碳酸氢钠) 80 小牛血清(56水浴灭活30分钟) 20 植物血凝素PHA (主要成分是粘多糖和蛋白质) 4 青霉素终浓度 100单位/毫升 链霉素终浓度 100单位/毫升 用3.5%NaHCO3调pH到7.0-7.2,玻璃滤器抽滤灭菌。在超净工作台,分装到培养瓶中(每瓶含培养基5毫升)。培养基置于-20冰箱保存。使用前从冰箱中取出

5、,温育至37。,2、肝素(heparin):浓度0.2,200毫克肝素粉末溶于100毫升生理盐水中。高压灭菌,冰箱保存备用。 3、秋水仙素:10微克/毫升,作为有丝分裂的阻止剂,抑制细胞分裂时纺锤体形成,使细胞分裂停止在中期。称10毫克秋水仙素溶于100毫升生理盐水中,配成100微克/毫升的原液,分装小瓶,高压灭菌,-20冰箱保存。临用时取上述原液用生理盐水稀释成10微克/毫升。 4、 0.075MKCl:0.559克氯化钾溶于100毫升双蒸水中。 5、 甲醇 ( methanol ) 二者以不同比例配合使用 6、 冰醋酸 (acetic glacid) 新鲜配制,、吉姆沙染液(Giemsa)

6、 吉姆沙由天青、伊红和甲基蓝组成 先将0.5克吉姆沙粉未干研磨,加33毫升60预热的纯甘油,在研钵中研磨,在60水浴中保温90分钟。冷却后,再加入33毫升甲醇,滤纸过滤,收集在棕色瓶中保存。原液要提前半年配制。原液中按比例加入磷酸缓冲液即可染染色体标本。 1份Giemsa原液 9份磷酸缓冲液 、磷酸缓冲液(pH 6.8) 溶液A:磷酸二氢钾 (KH2PO4.2H2O) 9.078克溶于1000毫升蒸馏水中。溶液B:磷酸氢二钠 (Na2HPO4.2H2O) 11.876克溶于1000毫升蒸馏水中。 100毫升缓冲液:需溶液50.8毫升,溶液49.2毫升。,五、注意事项 1、采血接种培养时,注意加

7、入适量的肝素。 2、培养基中不含L-谷氨酰胺,则溶解有RPMI1640培养基的液体可先用浓盐酸调pH值等于4,然后高压灭菌(注意121,15磅,灭菌15分钟)。冷却后,再加入L-谷氨酰胺、碳酸氢钠、PHA、灭活小牛血清和双抗。 3、接种的血样愈新鲜愈好,最好在24小时内培养。如果不能立刻培养,应置于4冰箱,保存时间过久会影响细胞活力。,4、温度和培养液的酸碱度十分重要。人的外周血中淋巴细胞培养最适温度为370.5,温度过高过低都将影响细胞的生长,但细胞对低温比对高温耐受力强;若是中途停电,可相应延长培养时间。培养液的最适pH7.2-7.4。pH偏酸,细胞发育不良,偏碱细胞会出现轻度固缩。 5、

8、PHA的质量和浓度是培养成败的关键问题。PHA如果保存时间太长,效价会降低,应在培养基中多加一些。 6、培养过程中,如发现血样凝集可轻轻震荡,使凝集块散开,继续培养。 7、最好使用水平式离心机,离心速度不易过高,否则沉降在管底的细胞团不易打散;反之,离心速度太低,细胞会丢失。,8、培养失败的可能原因: 培养瓶等器材洗涤不合要求。 配制培养基溶液的二或三蒸水不合要求。 PHA和培养基存放时间过长。 无菌操作不符合要求,发生细菌污染。 9、标本质量不佳的原因: (1)秋水仙素处理不当。 (2)低渗处理不当,低渗时间的掌握与气温有关。 (3)离心速度不合适。 (4)固定不充分:如固定液不新鲜,染色体形象模糊,呈毛刷状,染色体周围有胞浆背景。因此,固定液纯度要高,临用时新鲜配制。,

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