【食品课件】发酵工艺综合实验（通风模块）讲义.doc

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1、发 酵 工 艺 综 合 实 验 通风发酵模块 生物工程学院2004.10目 录 录实验讲义第一部分 基础实验（分析检测方法）实验一 淀粉质原料的水分测定 2实验二 原料中粗淀粉的测定 3实验三 还原糖的测定 7实验四 柠檬酸的检测 9实验五 蛋白酶活力的测定方法 11实验六 -淀粉酶的测定方法 13实验七 糖化酶的测定方法 15实验八 高效液相色谱法苹果酸 17第二部分 专业实验实验九 玉米淀粉液化及糖化 18实验十 面包酵母流加培养与分批培养试验 21实验十一 黑曲霉发酵生产柠檬酸实验 25实验十二 糖化酶的发酵和提取实验 27试验十三 中温-淀粉酶的摇瓶发酵实验 29实验十四 酸性蛋白酶固

2、态发酵实验 30实验十五 产富马酸酶菌种筛选及生物转化法制备L-苹果酸实验 31附录 34实验一 淀粉质原料的水分测定水分在工业发酵中是一个极为重要的分析项目。原料中水分，对原料的品质与保存关系甚大。水分过高，原料在贮藏时容易发霉变质，影响原料的利用价值。水分测定方法一般采用烘干法，即在100-105烘箱中直接干燥。1 原理样品中的水分受热后产生的蒸汽压，高于空气在电热干燥箱中的分压，水分便从样品中挥发出来。样品干燥的速度取决于这个压差的大小，在此条件下失去的主要是试样中的游离水。试样的水分一般是指在100左右直接干燥的情况下，所失去的总量。在此条件下失去的重量不仅是水分，还有微量的挥发性物质

3、。2 仪器与设备（1）分析天平（2）称量瓶（3）干燥器（4）电热恒温干燥箱3 测定步骤准确称取约2克试样，置入经100-l05干燥恒重后的称量瓶中，在100-105烘箱中干燥3-4小时，取出，置入干燥器中冷却至室温，称重。再于相同温度下干燥1小时左右，同上操作，直至恒重。计算式中 W0：称量瓶重（g） W1：干燥前试样与称量瓶重（g） W2：干燥后试样与称量瓶重（g）4 说明（1）原料的水分测定一般需采用100-105烘箱中直接干燥，其结果较为准确。对生产过程中的水分快速测定，可采用更高温度下干燥(如120-140)或红外灯下干燥，以缩短分析时间。（2）测定水分时，称量恒重指试样连续两次干燥后

4、，称量之差不超过2mg。5 参考书（1）天津轻工业学院等，工业发酵分析，轻工业出版社，1980年实验二 原料中粗淀粉的测定1 原理淀粉经酸或水解生成葡萄糖：所生成的葡萄糖用斐林试剂测定。斐林试剂由甲、乙液组成。甲液为硫酸铜溶液，乙液为氢氧化钠与酒石酸钾钠溶液。平时甲、乙液分别贮存，测定时甲、乙液等体积混合。混合时，硫酸铜与氢氧化钠反应，生成氢氧化铜沉淀：2NaOH+CuSO4=Cu(OH)2+Na2SO4所生成的氢氧化铜沉淀与酒石酸钾钠反应，生成酒石酸钾钠铜络合物，使氢氧化铜溶解：酒石酸钾纳铜络合物中二价铜是一个氧化剂，能使还原糖中羰基氧化，而二价铜被还原生成一价的氧化亚铜沉淀：反应终点用次甲

5、基蓝指示剂显示。因次甲基蓝氧化能力较二价铜弱，故待二价铜全部被还原后，过量一滴还原糖立即使次甲基蓝还原，溶液蓝色消失以示终点：2 试剂2.1 斐林试剂甲液：称取69.3克硫酸铜(CuSO415H2O)，用水溶解并稀释至1000毫升，如有不溶物可用滤纸过滤。乙液：称取346克酒石酸钾钠，100克氢氧化钠，用水溶解并稀释至1000毫升。2.2 2盐酸溶液量取4.5毫升浓盐酸，用95.5毫升水稀释。2.3 20盐酸溶液量取20毫升浓盐酸，缓慢倒入80毫开水中。2.4 20氢氧化钠溶液称取200克氢氧化钠，用水溶解并稀释至1000毫升。2.5 1次甲基蓝溶液称取1克次甲基蓝，加100毫升水，加热溶解，

6、贮存于棕色瓶中。2.6 0.2标准葡萄糖溶液准确称取2克无水葡萄糖(预先于100l05烘干)，用水溶解，加5毫升浓盐酸，用水定容至1000毫升。3 仪器与设备（1）三角瓶（2）长玻璃管(约1米)（3）容量瓶（4）分析天平（5）干燥器（6）电热恒温干燥箱（7）滴定管（8）称量瓶（9）移液管（10）pH试纸试验（11）电炉（12）小铜锅4 测定步骤4.1 试样水解粗淀粉测定中试样水解：准确称取试样1.52克，置入250毫升三角瓶中。加l00毫升2%盐酸溶液，轻轻摇动三角瓶，使试样充分湿润。瓶口按上回流冷凝器或长玻璃管(约1米)，于沸水浴中回流水解3小时(图2-1)。取出，迅速冷却，用20氢氧化钠溶

7、液中和至中性或微酸性(用pH试纸试验)。滤纸过滤滤液用500毫升容量瓶接收，用水充分洗搽残渣，然后用水定容至刻度，摇匀，为供试糖液。4.2 斐林试剂的校正吸取斐林试剂甲、乙液各5毫升，置入250毫升三角瓶中，加20毫升水，并从滴定管中加入约24毫升0.2标准葡萄糖溶液(其量应控制在后滴定时消耗0.2标准葡萄糖溶液在1毫升以内)，摇匀，于电炉上加热至沸，并保持微沸2分钟。加2滴1次甲基蓝溶液继续用0.22标准葡萄糖溶液滴定至蓝色消失，此滴定操作需在1分钟内完成。总耗糖量为v毫升。图2-1 水解装置校正值的计算：先求得10毫升斐林试剂相当的葡萄糖克数(F)，F=CV式中 C：标准葡萄糖溶液浓度(g

8、/ml)再从斐林试剂糖量表(见附表2-1)查得V毫升时相当的葡萄糖克数(F0)，斐林试剂校正值f为：4.3 定糖吸取斐林试剂甲、乙液各5毫升，置入250毫升三角瓶中，加20毫升水，并从滴定管中预先加入适量的水解糖液(其量应控制在后滴定时消耗水解糖液在1毫升以内)，摇匀，于电炉上加热至沸，并保持微沸2分钟。加2滴1次甲基蓝溶液，继续用水解糖液滴定至蓝色消失，此滴定操作需在1分钟内完成。5 计算从附表2-1查得10毫升斐林试剂消耗水解糖液体积相当于100毫升水解糖液中所含葡萄糖量（G），则1毫升水解糖液中含葡萄糖量为G/100，再乘以斐林试剂校正值，即为1毫升水解糖液中实际含葡萄糖量：式中 500

9、：试样稀释体积（ml） W：试样重量（g） 0.9：葡萄糖与淀粉的换算系数6 参考书（1）天津轻工业学院等，工业发酵分析，轻工业出版社，1980年附表2-1 斐林试剂糖量表消耗糖液体 积(毫升)相当葡萄糖 量(毫克)100毫升糖液中所含葡萄糖的量(毫克)消耗糖液体 积(毫升)相当葡萄糖 量(毫克)100毫升糖液中所含葡萄糖的量(毫克)15161718192021222324252627282930313249.149.249.349.349.449.549.549.649.749.849.849.949.950.050.050.150.250.2327307289274260247.4235.

10、8225.5216.1207.4199.3191.8184.9178.5172.5167.0161.8156.933343536373839404142434445464748495050.350.350.450.450.550.550.650.650.750.750.750.850.950.951.051.051.051.1152.4148.0143.9140.0136.4132.9129.6126.5123.6120.8118.1115.5113.0110.6108.4106.2104.1102.2实验三 还原糖的测定1 原理原糖的测定采用快速法。其反应与粗淀粉测定相似，不同点为斐林试剂甲

11、液中硫酸铜量较小，适用于含糖量较少的试样。另外，斐林试剂中加入亚铁氰化钾(黄血盐)，使红色氧化亚铜沉淀生成可溶性的复盐，反应终点更为明显。Cu2O+K4Fe(CN)6+H2O=K2Cu2Fe(CN)6+2KOH (淡黄色)2 试剂2.1 斐林试剂甲液：称取35g硫酸铜，0.05g次甲基蓝，用水溶解并定容至1000ml。乙液：称取117g酒石酸钾钠，126.4g氢氧化钠，9.4g亚铁氰化钾，用水溶解并定容至1000ml。2.2 0.1%标准葡萄糖溶液精密称取1.0000g经95105烘干的无水葡萄糖，用少量水溶解，加入5ml盐酸，用蒸馏水定容至1000ml，摇匀。3 仪器与设备（1）三角瓶（2）

12、容量瓶（3）分析天平（4）干燥器（5）电热恒温干燥箱（6）滴定管（7）称量瓶（8）移液管（9）电炉4 测定步骤4.1 斐林试剂的标定吸取斐林试剂甲、乙液各5毫升，置入250毫升三角瓶中，加10毫升水，并从滴定管中预先加入约20毫升0.1%标准葡萄糖溶液(其量控制在后滴定时消耗0.1%标准葡萄搪溶液1毫升以内)，摇匀，于电炉上加热至沸，立即以45秒钟1滴的速度继续用0.1%标准葡萄糖溶液滴定至蓝色消失，此滴定操作需在1分钟内完成，总耗糖量为V0毫升。4.2 定糖预备试验：吸取斐林试剂甲、乙液各5毫升，置入250毫升三角瓶中，加入V1毫升试样稀释液(含葡萄糖量约为515毫克)及适量的0.1%标准葡

13、萄糖溶液，摇匀，以下同标定时操作，总耗糖量为V2毫升。正式试验：吸取斐林试剂甲、乙液各5毫升，置入250毫升三角瓶中，加V1毫升试样稀释液和(V2-1)毫升0.1%标准葡萄糖溶液，补加(V0+10)-(V1+V2)毫升水，摇匀，以下同标定时操作，总耗糖量为V毫升。重复测定两次，取总消耗标准葡萄糖液体积的平均值V ml。5 计算式中 V0：斐林试剂标定值(毫升)V：斐林试剂测定值(毫升)C：标准葡萄糖溶液浓度(克/毫升)n：试样稀释倍数v1：所取试样稀释液体积(毫升)6 说明(1)滴定速度、三角瓶壁厚度和热源的稳定程度等，对测定精密度影响很大。平行测定的滴定毫升数相差不应超过0.1ml，故在标定

14、、预备、正式测定过程中，实验条件应力求一致。(2)滴定过程应该始终保持在微沸状态下进行。沸腾后继续滴定至终点的毫升数应控制在0.5lml内，否则应重新测定。(3)样品液中还原糖浓度不宜过高或过低，根据预备试验结果，应将样品液稀释至还原糖的含量在1%左右为宜。(4)滴定至终点蓝色褪去之后，就不应再滴定，因四甲基蓝指示剂被还原褪色后，当接触空气时，又会被氧化重现篮色。(5)斐林溶液与还原糖之间的反应因受溶液碱性、加热湿度和时间以及副反应等影响，而没有严格的定量关系，不能由当量定律来求出试样中还原糖的含量，只熊根据在相同实验条件下消耗相应的标准还原糖量或由严格相同的实验条件下得出的还原糖检索表上查得

15、相应的还原糖量来进行计算。所以用廉-爱农法定糖时，必须先用相应的标准还原糖标定斐林溶液。7 参考书（1）天津轻工业学院等，工业发酵分析，轻工业出版社，1980年实验四 柠檬酸的检测1 仪器、设备和材料（1）滴定管（2）三角瓶（3）移液管（4）分光光度计（5）氢氧化钠（6）吡啶（7）醋酸酐（8）酚酞2 总酸的测定2.1 标准NaOH溶液的配制称取5.75gNaOH溶于煮沸过的冷蒸馏水中，定容到1000mL。2.2 标准NaOH溶液的标定将苯二甲酸氢钾于l00干燥2小时，精确称取0.5g，用50mL热蒸馏水溶解，冷至室温，加酚酞指示剂2滴，用待标定的NaOH溶液滴定至淡粉红色，计算如下：2.3 酸

16、度测定取发酵滤液1mL，加50ml蒸馏水，以酚酞为指示剂，用标准NaOH溶液滴定至淡粉红色。如果NaOH浓度为O.1429-0.1430mol/L，则所消耗的NaOH毫升数即是酸度。3 柠檬酸的测定3.1 原理：柠檬酸在醋酐存在下与吡啶生成黄色化合物，可以在420nm下比色定量。3.2 步骤3.2.1 绘制标准曲线精确称取分析纯柠檬酸l克，溶解后在容量瓶中定容至1000ml，即浓度为lg/L。使用时再将其稀释成50、100、150、200、250、300、350、400、450、500mg/L的标准溶液。分别吸取不同浓度的标准液lml，加入醋酸酐5.7mL，吡啶1.3mL。立即塞上塞子摇匀，放

17、入2229恒温水浴中保温30min，再立即取出，用分光光度计在420nm波长下比色。将记录的数据绘制成标准曲线。3.2.2 柠檬酸浓度的测定把发酵醪液稀释适当倍数（其中柠檬酸含量应在200400mg/L之间，然后取lml加醋酸酐5.7ml，吡啶1.3ml，后述操作与前述标准样测定相同。最后从标准曲线上查出柠檬酸含量。3.3 计算或3.4 注意事项（1）此法是测定柠檬酸根的，但酒石酸、衣康酸、异柠檬酸存在直接影响显色，反丁烯二酸、丙酮酸、L-苹果酸存在也有少量干扰。（2）本反应的时间性很强，与吡啶生成的黄色会随时间的延长而加深，所以必须严格控制时间。如处来不及测定应将样品置于于冰浴中终止反应。（

18、3）吡啶和醋酐都是易挥发物质，为了保证测定精度，加入试剂后应立即塞上塞子，整个操作越快越好。（4）本法对温度要求严格，不同温度范围其显色情况不同，应严加控制。4 参考书（1）金其荣等，有机酸发酵工艺学，轻工业出版社，1989年实验五 蛋白酶活力的测定方法1 原理根据福林试剂(磷钼酸与磷钨酸混合物)，在碱性情况下极不稳定，可被酞类化合物还原而呈蓝色反应(钼蓝和钨蓝的混合物)，由于蛋白质分子中含有酚基的氨基酸(如酪氨酸、色氨酸及苯丙氦酸等)，它使蛋白质或其水解产物也呈这个反应，于是就可利用这个原理来测定蛋白酶活力的强弱，即以酪蛋白为作用底物，在一定pH与温度下，同酶液反应，经一定时间后，加入三氯醋

19、酸，以终止酶反应，并使残余的酪蛋白质沉淀，同水解产物分开，经过滤后取滤液(即含蛋白水解产物的三氯醋酸液)。用碳酸钠碱化，再加入福林试剂使之发色，用分光光度计或光电比色计测定。蓝色反应的强弱，同三氯醋酸中蛋白水解产物的多少成正比而水解产物的量又是同酶活力成正比例关系。因此，根据蓝色反应的强弱就可推测蛋白酶的活力。2 试剂2.1 福林试剂于2000ml磨口回流装置内加入钨酸钠(Na2WO42H2O)100g，钨酸钠(NaMoO42H2O)25g，水700ml，85%磷酸50m1，浓盐酸1000ml，文火回流10h加入硫酸锂(Li2SO4)150g，蒸溜水50m1，混匀取去冷凝器，加入几滴液体溴，再

20、煮沸l5min，以驱逐残溴及除去颜色，溶液应呈黄色而非绿色。若溶液仍有绿色，需再滴加溴液。再煮沸除去之。冷却后，定溶至1000ml。细菌漏斗45号过滤，置于棕色瓶中保存。此溶液使用时加2倍蒸馏水稀释，即成稀释的福林试剂。2.2 0.4mol/L三氯醋酸(TCA)溶液称取三氯醋酸65.4g，定容至1000ml。2.3 0.4mol/L碳酸钠溶液称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4g，定容至1000m1。2.4 0.05mol/L pH2.5 乳酸-乳酸钠缓冲液A液：称取10.6g80-90%乳酸加蒸馏水定容至1000ml。B液：称取16克70%乳酸钠加蒸馏水定容至1000ml。取A液16ml与

21、B液1ml稀释1倍即成0.05mol/L pH2.5 乳酸-乳酸钠缓冲液。2.5 2%酪蛋白溶液称取干酪素2g加入0.1mol/L氢氧化钠20ml在水浴中加热使溶解(必要时用小火加热煮沸)，然后用pH2.5乳酸-乳酸钠缓冲液定容至1000mI即成。配制后应及时使用或放入冰箱内保存。否则极易繁殖细菌，引起变质。配制酪蛋白溶液定容时，若泡沫过多，则可加12滴酒精消泡。3350酸性蛋白酶酪蛋白溶液的配制，应加弄乳酸23滴湿润。2.6 100g/m1酪氨酸溶液精确称取在l05烘箱中烘至恒重的酪氨酸0.1g，逐步加入0.1mol/L盐酸(HCl)使溶解，加蒸溜水定容至100m1，其浓度为1000g/m1

22、。再吸取此液10ml以蒸馏水定容至100ml即配成100g/m1酪氨酸镕液此溶液配成后也应及时使用或放入冰箱内保存，以免繁殖细菌而变质。3 操作步骤3.1 标准曲线的绘制（1）按表配制各种不同浓度的酪氨酸溶液试剂（ml）管 号123456蒸馏水1086420100g/m1酪氨酸0246810酪氨酸最终浓度（g/m1）020406080100(2)测定步骤另取6支试管按上表编号分别吸取不同浓度的酪氨酸1ml，各加入0.4mo1/L碳酸钠5m1，再加入已稀释的福林试剂1m1。摇匀置于水浴锅中，40保温发色20min，在于波长660nm处测定吸光度。一般测3次，取平均值以吸光度为纵座标。酪氨酸的浓度

23、为横座标，绘制成标准曲线。3.2 酶液的制备 准确称取蛋白酶固态发酵的湿曲2g，用1020ml蒸馏水，30浸提半小时，用滤纸过滤。将滤液稀释一定倍数(使其测定光密度在0.20.4范围内为宜)。3.3 测定 取四支试管，分别加入1ml稀释酶液，其中一支为空白管，三支为平行试验管。置入40水浴中预热35min，在三支平行试验管中分别加入1ml2%酪蛋白溶液，准确计时保温10min。立即加入2ml 0.4M三氯乙酸溶液，l5min后用滤纸过滤。分别吸取1ml清液，加5ml0.4M碳酸钠溶液，最后加入1ml福林-酚试剂，摇匀，于40水浴中显色20min。 空白管中先加入2ml0.4M三氯乙酸溶液，再加

24、lml2%酪蛋白溶液，15min后用滤纸过滤。以下操作与平行试验管相同。见空白管为对照，在680纳米波长下测光密度，取其平均值。4 计算蛋白酶活力单位定义：在40，pH2.5下，每分钟水解酪蛋白释放1微克酪氨酸的酶量定义为1个蛋白酶单位。 式中 K：标准曲线中OD值为1所相当的酪氨酸的微克数OD：平行试验管的平均光密度4：试管中反应液总体积(毫升) 10：反应10分钟N：稀释倍数W：曲的称取量(克)5 说明（1）对于同一台分光光度计与同一批福林-酚试剂，其工作曲线K值可以沿用，当另配福林-酚试剂时，工作曲线应重作。（2）当用不同产品的酪蛋白对同一蛋白酶测定时，其结果会有差异，故蛋白酶活力表示时

25、应注明所用酪蛋白的生产厂。6 参考书（1）邬显章，酶的工业生产技术，吉林科学技术出版社，1988年实验六 -淀粉酶的测定方法1 原理 液化型淀粉酶(即-1，4-糊精酶，俗称-淀粉酶)能将淀粉分子键的-1，4-葡萄糖苷键任意切断成长短不一的短链糊精，以及少量麦芽糖和葡萄糖，而使淀粉对碘呈蓝紫色特异反应逐渐消失，以该颜色消失的速度计算酶的活力。2 试剂2.1 原碘液称取碘(I2)11g，碘化钾(KI)22g，先用少量蒸馏水使碘完全溶解后定容至500m1，贮于棕色瓶内。2.2 稀碘液取原碘液2m1，加入KI 20g，用蒸馏水溶解定容至500ml，贮于棕色瓶内。2.3 2%可溶性淀粉精确称取2.000

26、g可溶性淀粉(以绝干计)，然后用少量蒸馏水调匀，徐徐倾于煮沸的蒸馏水中，加热煮沸至透明为止，冷却定容至100ml。此溶液需当天配制。2.4 0.02mol/L pH 6.0磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液称取磷酸氢二钠(Na2HPO4H2O) 45.2g和柠檬酸(C6H8O7H2O)8.07g，用蒸馏水溶解定容至1000ml，配好后应以酸度计或精密试纸校正pH。2.5 标准终点色溶液 A液 精确称取氯化钴(CoCl6H2O)40.2439g和重镉酸钾(K2Cr2O7)0.4878g，以蒸馏水溶解定容至500ml。 B液 精确称取 铬黑T(C20H 12N2NaO7S)10mg，以蒸馏水溶解定容至100

27、mI。 使用时取A液40m1与B液50ml混合。此混合液宜冰箱保存，使用15天后需要重新配制。 3 操作步骤3.1 待测酶液的制备 取发酵液的滤液用pH6.0磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液适当稀释，供测定用。3.2 测定 取2ml标准终点色溶液滴于白磁板空穴内，作为比较颜色的标准。 取20ml 2%可溶性淀粉和5m1pH6.0磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液，放于20200mm大试管中，在60恒温水浴中预热4-5min然后加入预先稀释好的酶液0.5m1，立即记录时间，充分摇匀。定时用滴管取出反应液约0.5m1，滴于预先充满比色稀碘浓(约1.5ml)的磁扳空穴内，当穴内颜色反应由紫色逐渐变为红棕色，与标准终点

28、色相同时，即为反应终点，并记录时间t(min)。4 计算1m1酶液于60，pH6.0的条件下，用I h液化可溶性淀粉的克数来表示（g可溶性淀粉/m1h）。式中 60：60min 20：可溶性淀粉的毫升数 n：稀释倍数 t：测定记录时间(min) 2%：淀粉浓度 0.5：测定时的用酶量5 注意事项（1）酶反应全部时间控制在22.5min之间（酶活力1015单位）。（2）为统一起见，可溶性淀粉使用浙江菱湖淀粉厂生产的化学纯试剂配制，如暂时不能购到，需要使用其他厂生产的可溶性淀粉时，必须放对照试验（3）测定时照明采用40W日光灯，灯与白磁板的间距以60 cm为宜。6 参考书（1）邬显章，酶的工业生产

29、技术，吉林科学技术出版社，1988年实验七 糖化酶的测定方法1 原理糖化型淀粉酶（即淀粉-1，4-葡萄糖苷酶）有催化淀粉水解的作用，从淀粉分子非还原性末端开始，分解-1，4-糖苷键生成葡萄糖，反应生成的葡萄糖用次碘酸钾法定量测定，以表示糖化性淀粉酶的活力。2 试剂2.1 0.1mol/L pH4.6醋酸钠缓冲液称取醋酸钠(CH3COONa3H2O)6.7g和冰醋酸(CH3COOH)2.6m1，用蒸馏水溶解，定容至1000m1。上述缓冲液应以酸度计或精密试纸校正pH。2.2 0.1mol/L硫代硫酸钠溶液(1)配制：称取硫代硫酸钠(Na2S2O35H2O)24.82g和硫酸钠0.2g溶于煮沸后冷

30、却的蒸馏水中，定容至1000ml，即得0.1 mol/L硫代硫酸钠溶液。贮于棕色瓶中密封保存，配制后应放置一星期标定使用。0.05mol/L溶液则用蒸馏水稀释制得。(2)标定：取在120下干燥至恒重的标准重铬酸钾0.25g精密称量。置碘量瓶中，加水50m1使溶解，加碘化钾2g。轻轻振摇使溶解，加1mol/L硫酸溶液40m1摇匀，密塞。在暗处放置10min后用蒸馏水250ml稀释，用此液滴定至近终点时，加淀粉指示液3ml，继续滴定至蓝色消失而显亮绿色。并将滴定的结果用空白试验校正。每1ml的0.1mol/L硫代硫酸钠液相当于4.903mg重铬酸钾。根据本液的消耗量与重铬酸钾的用量，计算硫代硫酸钠

31、的当量浓度。本溶液需每月标定一次。2.3 0.1mol/L碘液称取碘化钾(K1)36g，溶解在100m1蒸馏水中，再加入碘(I2)12.98g溶解，定容至1000ml贮存于棕色瓶中。用标准的0.05mol/L硫代硫酸钠溶液标定碘液。吸取10ml待标定的碘液放入250m1碘量瓶中，以0.05m/L硫代硫酸钠滴定至淡黄色时，加入1%淀粉指示剂l-2滴，继续滴定至无色为终点。式中 N1：硫代硫酸钠的浓度(mol/L) V1：消耗硫代硫酸钠的毫升数 V：碘液毫升数2.4 0.1mo1/L氢氧化钠溶液称取4g氢氧化钠(NaOH)加蒸馏水溶解，定容至1000ml。2.5 1mol/L硫酸溶液量取浓硫酸5.

32、6ml，慢慢加入于80 m1蒸馏水中，冷却后定容至l00ml，摇匀。2.6 20%氢氧化钠溶液称取20g氢氧化钠，溶解定容至100ml。2.7 2%可溶性淀粉称取可溶性淀粉2g，然后用少量蒸馏水调匀，徐徐倾入巳沸的蒸馏水中，煮沸至透明，冷却定容至l00ml，此溶液需当天配制。3 操作方法3.1 待测酶液的制备取发酵液的滤液用pH4.6醋酸钠缓冲液适当稀释，供测定用。3.2 测定于甲、乙两支比色管中(50ml)，分别加入20%可溶性淀粉溶液25m1及0.1mol/L pH4.6的醋酸-醋酸钠缓冲液5ml，摇匀，40的恒温水浴中预热(5-10min)。在甲管中加入酶液2ml(酶活总量约100-17

33、0单位)，立即记时间，摇匀。在此温度下准确反应1h后，立即各加20%NaOH溶液0.2m1，摇匀，将两管取出迅速用水冷却，并于乙管中补加酶液2m1。取上述反应液5m1放入碘量瓶中，准确加入0.1mol/L碘液10ml，再加入0.1mol/L氢氧化钠15ml(边摇晃)。暗处放置15min，加入1mol/L硫酸2m1，用0.05mol/L硫代硫酸钠滴定至无色为终点。4 计算糖化酶活力单位的定义：在40、pH4.6的条件下，1小时水解可溶性淀粉产生1毫克葡萄糖所需的酶量为一个糖化酶活力单位。式中 A：空白所消耗硫代硫酸钠毫升数5：样品所消耗硫代硫酸钠毫外数N：硫代硫酸钠摩尔浓度90.05：1ml l

34、 mol/L硫代硫酸钠所相当的葡萄糖毫克数1/2：折算成1m1酶液的量32.2：反应液总体积毫升数5：吸取反向液毫升数n：稀释倍数5 注意事项（1）酶液制备时，酶液浓度最好控制在消耗0.05mol/L硫代硫酸钠（空白和样品）的差数为36ml左右(以每毫升约5090单位为宜)。（2）为统起见可溶性淀粉使用浙江菱湖淀粉厂生产的化学纯试剂配制，如暂不能购制，而需使用其他厂生产的可溶性淀粉时，必须做对照试验。6 参考书（1）邬显章，酶的工业生产技术，吉林科学技术出版社，1988年实验八 高效液相色谱法苹果酸1 目的掌握高效液相色谱法的基本原理，仪器操作及苹果酸的测定方法2 原理高效液相色谱（High

35、Performance Liquid Chromatography）是一类分离与分析技术，可以分离分析高极性、高分子量、离子型的各种物质，已成为许多学科科学研究和日常分析的重要手段。高效液相色谱的特点是高压、高效、高灵敏度和分析速度快。高效液相色谱是利用混合物中不同组分在两相间平衡分配的差异进行分离，根据保留时间进行定性，根据峰面积进行定量。3 高效液相色谱仪器设备及苹果酸测定的色谱条件Agilent 1100系列：四元混合梯度泵，脱气机，柱温箱，检测器（紫外检测器、二极管阵列检测器、示差折光检测器、荧光检测器、电化学检测器等），工作站。苹果酸测定色谱条件：流动相为0.01mol/LKH2PO

36、4溶液，色谱柱为ZORBAX SB C18柱（4.6250mm，5m），流速为0.5ml/min，紫外检测，波长为215nm，进样量为5 L。4 试剂0.01mol/LKH2PO4水溶液：称取磷酸二氢钾1.36克，用超纯水溶解并定容至1000mL。经0.45m膜过滤，备用。5 实验步骤5.1 标准曲线的绘制配制浓度分别为10、50、100、150、200mg/L的标准苹果酸溶液，高效液相色谱法测定后，以标准溶液的浓度为横坐标，苹果酸峰面积为纵坐标，绘制标准曲线。5.2样品预处理转化液离心后，经C18固相萃取小柱处理后进样分析。6 计算采用外标法，根据样品的峰面积查标准曲线得样品中苹果酸的含量。

37、计算公式：C样品C标样A标样/A样品实验九 玉米淀粉液化及糖化1 实验目的及要求要求学生掌握用酶法从淀粉原料到水解糖的制备原理及方法。掌握粗淀粉含量和还原糖的化学测定方法。2 实验原理发酵过程中，有些微生物不能直接利用淀粉，因此，当以淀粉为原料时，必须先将淀粉水解成葡萄糖，才能供发酵使用。一般将淀粉水解为葡萄糖的过程称为淀粉的糖化，所制得的糖液称为淀粉水解糖。发酵生产中，淀粉水解糖液的质量，与生产菌的生长速度及产物的积累直接相关。 可以用来制备淀粉水解糖的原料主要有薯类(木薯、甘薯)淀粉、玉米淀粉、小麦淀粉、大米淀粉等，根据原料淀粉的性质及采用的水解催化剂的不同，水解淀粉为葡萄糖的方法可分为酸

38、解法、酸酶结合法和酶解法。实验室中常采用酶解法制备淀粉水解糖。 酶解法是指利用淀粉酶将淀粉水解为葡萄糖的过程。酶解法制葡萄糖可分为两步：第l步是利用-淀粉酶将淀粉液化为糊精及低聚糖，使淀粉的可溶性增加，这个过程称为液化；第2步是利用糖化酶将糊精或低聚糖进一步水解，转变为葡萄糖的过程，在生产上称为糖化。淀粉的液化和糖化都是在酶的作用下进行的，故也称为双酶水解法。2.1 酶法液化原理淀粉的酶法液化是以-淀粉酶为催化剂，该酶作用于淀粉的-1,4糖苷键，从内部随机地水解淀粉，从而迅速将淀粉水解为糊精及少量麦芽糖，所以也称内切淀粉酶。淀粉受到-淀粉酶的作用后，其碘色反应发生如下变化：蓝紫红浅红不显色(即

39、碘原色)。酶法液化以生产工艺不同分为间歇法，半连续和连续式；液化设备有：管式、罐式、喷射式。加酶方法有：一次加酶、二次加酶、三次加酶。根据酶制剂的耐温性分为中温酶法、高温酶法、或中温酶和高温酶混合法。本实验采用：高温酶法，间歇式，罐式，二次加酶法。2.2 酶法糖化原理淀粉的糖化是以糖化酶为催化剂，该酶从非还原末端以葡萄糖为单位顺次分解淀粉的-1，4糖苷键或-1，6糖苷键。因为是从链的一端逐渐地一个个地切断为葡萄糖，所以称为外切淀粉酶。淀粉糖化的理论收率：因为在糖化过程中，水参与反应，故糖化的理论收率为111.1。（C6H10O5)n+H2O nC6H12O6 162 18 180淀粉糖化实际收

40、率：实际收率的计算公式：淀粉转化率：淀粉-葡萄糖转化率是指100份淀粉中有多少份淀粉被转化为葡萄糖。淀粉转化率的计算：DE值：用DE值表示淀粉水解的程度或糖化程度。糖化液中还原性糖以葡萄糖计，占干物质的百分比称为DE值。DE值计算：还原糖用裴林氏法或碘量法测定，浓度表示：葡萄糖g/100ml糖液；干物质用阿贝折光仪测定，浓度表示：干物质g/100g糖液。影响DE值的因素：糖化时间：最初糖化时，糖化速度快，DE值显著上升；但24h后，当DE值达到90以上时，糖化速度显著放慢。液化DE值与糖化DE值的关系：液化程度应控制适当，太低或太高均不利。原因是液化程度低，则粘度大，难操作；同时，由于液化程度

41、低，底物分子少，水解机会少，影响糖化速度；液化程度低，易发生老化；但液化超过一定程度，则不利于糖化酶与糊精生成络合结构，影响催化效率，造成糖化液的最终DE值低。故应在碘试本色的前提下，液化DE值越低，则糖化液的最高DE值越高。一般液化DE值应控制在12-18。酶制剂用量与糖液DE值的关系：糖化时间与糖化酶用量关系表糖化时间（h）68101624324872糖化酶用量（U/g淀粉）480400320240180150120100为加快糖化速度，可以提高酶用量，缩短糖化时间。但酶用量太高，反而使复合反应严重，最终导致葡萄糖值降低。在实际生产中，应充分利用糖化罐的容量，尽量延长糖化时间，减少糖化酶用量。糖化酶参考用量：液化DE值17，淀粉乳33，60，pH4.5，酶制剂240U/g绝干淀粉。糖化时间16h。3 实验仪器、设备和材料