基因克隆基本实验方法.docx

《基因克隆基本实验方法.docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《基因克隆基本实验方法.docx（42页珍藏版）》请在三一办公上搜索。

1、基因克隆基本实验方法重组质粒的连接、转化及筛选 第一节 概 述 质粒具有稳定可靠和操作简便的优点。如果要克隆较小的DNA片段(10kb)且结构简单,质粒要比其它任何载体都要好。在质粒载体上进行克隆,从原理上说是很简单的，先用限制性内切酶切割质粒DNA和目的DNA片段, 然后体外使两者相连接, 再用所得到重组质粒转化细菌,即可完成。但在实际工作中, 如何区分插入有外源DNA的重组质粒和无插入而自身环化的载体分子是较为困难的。通过调整连接反应中外源DNA片段和载体DNA的浓度比例,可以将载体的自身环化限制在一定程度之下,也可以进一步采取一些特殊的克隆策略,如载体去磷酸化等来最大限度的降低载体的自身

2、环化,还可以利用遗传学手段如互补现象等来鉴别重组子和非重组子。 外源DNA片段和质粒载体的连接反应策略有以下几种： 1、带有非互补突出端的片段 用两种不同的限制性内切酶进行消化可以产生带有非互补的粘性末端,这也是最容易克隆的DNA片段，一般情况下,常用质粒载体均带有多个不同限制酶的识别序列组成的多克隆位点，因而几乎总能找到与外源DNA片段末端匹配的限制酶切位点的载体，从而将外源片段定向地克隆到载体上。也可在PCR扩增时，在DNA片段两端人为加上不同酶切位点以便与载体相连。 2、带有相同的粘性末端 用相同的酶或同尾酶处理可得到这样的末端。 由于质粒载体也必须用同一种酶消化，亦得到同样的两个相同粘

3、性末端，因此在连接反应中外源片段和质粒载体DNA均可能发生自身环化或几个分子串连形成寡聚物, 而且正反两种连接方向都可能有。所以，必须仔细调整连接反应中两种DNA的浓度, 以便使正确的连接产物的数量达到最高水平。还可将载体DNA的5磷酸基团用碱性磷酸酯酶去掉, 最大限度地抑制质粒DNA的自身环化。带5端磷酸的外源DNA片段可以有效地与去磷酸化的载体相连, 产生一个带有两个缺口的开环分子,在转入E. coli受体菌后的扩增过程中缺口可自动修复。 3、带有平末端 是由产生平末端的限制酶或核酸外切酶消化产生，或由DNA聚合酶补平所致。由于平端的连接效率比粘性末端要低得多，故在其连接反应中，T4 DN

4、A连接酶的浓度和外源DNA及载体DNA浓度均要高得多。通常还需加入低浓度的聚乙二醇(PEG 8000)以促进DNA分子凝聚成聚集体的物质以提高转化效率。 特殊情况下，外源DNA分子的末端与所用的载体末端无法相互匹配,则可以在线状质粒载体末端或外源DNA片段末端接上合适的接头(linker)或衔接头(adapter)使其匹配, 也可以有控制的使用E. coli DNA聚合酶的klenow大片段部分填平3凹端,使不相匹配的末端转变为互补末端或转为平末端后再进行连接。 本实验所使用的载体质粒DNA为pBS,转化受体菌为E. coli DH5菌株。由于pBS上带有Ampr 和lacZ基因,故重组子的筛

5、选采用Amp抗性筛选与-互补现象筛选相结合的方法。 因pBS带有Ampr 基因而外源片段上不带该基因,故转化受体菌后只有带有pBS DNA的转化子才能在含有Amp的LB平板上存活下来;而只带有自身环化的外源片段的转化子则不能存活。此为初步的抗性筛选。 pBS上带有-半乳糖苷酶基因(lacZ)的调控序列和-半乳糖苷酶N端146个氨基酸的编码序列。这个编码区中插入了一个多克隆位点,但并没有破坏lacZ的阅读框架,不影响其正常功能。E. coli DH5菌株带有-半乳糖苷酶C端部分序列的编码信息。在各自独立的情况下,pBS和DH5编码的-半乳糖苷酶的片段都没有酶活性。但在pBS和DH5融为一体时可形

6、成具有酶活性的蛋白质。这种lacZ基因上缺失近操纵基因区段的突变体与带有完整的近操纵基因区段的-半乳糖苷酸阴性突变体之间实现互补的现象叫-互补。由-互补产生的Lac+ 细菌较易识别，它在生色底物X-gal(5-溴-4氯-3-吲哚-D-半乳糖苷)下存在下被IPTG(异丙基硫代-D-半乳糖苷)诱导形成蓝色菌落。当外源片段插入到pBS质粒的多克隆位点上后会导致读码框架改变, 表达蛋白失活, 产生的氨基酸片段失去-互补能力, 因此在同样条件下含重组质粒的转化子在生色诱导培养基上只能形成白色菌落。在麦康凯培养基上，-互补产生的Lac+细菌由于含-半乳糖苷酶，能分解麦康凯培养基中的乳糖，产生乳酸，使pH下

7、降，因而产生红色菌落，而当外源片段插入后，失去-互补能力，因而不产生-半乳糖苷酶，无法分解培养基中的乳糖，菌落呈白色。由此可将重组质粒与自身环化的载体DNA分开。此为-互补现象筛选。 第二节 材料、设备及试剂 一、 材料 外源DNA片段: 自行制备的带限制性末端的DNA溶液,浓度已知; 载体DNA: pBS质粒(Ampr ,lacZ),自行提取纯化,浓度已知; 宿主菌: E. coli DH5,或JM系列等具有-互补能力的菌株。 二、 设备 恒温摇床，台式高速离心机，恒温水浴锅， 琼脂糖凝胶电泳装置， 电热恒温培养箱，电泳仪无菌，工作台， 微量移液枪，eppendorf管。 三、 试剂 1、连

8、接反应缓冲液(10)：0.5mol/L TrisCl (pH7.6)，100mol/L MgCl2，100mol/L 二硫苏糖醇(DTT)(过滤灭菌），500g/ml 牛血清清蛋白(组分V.Sigma 产品），10mol/L ATP。 2、T4 DNA连接酶(T4 DNA ligase)；购买成品。 3、X-gal储液(20mg/ml): 用二甲基甲酰胺溶解X-gal配制成20mg/ml的储液, 包以铝箔或黑纸以防止受光照被破坏, 储存于-20。 4、IPTG储液(200mg/ml): 在800l蒸馏水中溶解200mg IPTG后,用蒸馏水定容至1ml,用0.22m滤膜过滤除菌，分装于eppe

9、ndorf管并储于-20。 5、麦康凯选择性培养基(Maconkey Agar)：取52g麦康凯琼脂加蒸馏水1000ml，微火煮沸至完全浴解，高压灭菌，待冷至60左右加入Amp储存液使终浓度为50mg/ml，然后摇匀后涂板。 6、含X-gal和IPTG的筛选培养基：在事先制备好的含50g/ml Amp的LB平板表面加40ml X-gal储液和4lIPTG储液,用无菌玻棒将溶液涂匀,置于37下放置3-4小时,使培养基表面的液体完全被吸收。 7、感受态细胞制备试剂: 见第三章。 8、煮沸法快速分离质粒试剂: 见第一章。 9、质粒酶及电泳试剂: 见第二章。 第三节 操作步骤 一、 连接反应 1、取新

10、的经灭菌处理的0.5ml eppendorf管, 编号。 2、将0.1g载体DNA转移到无菌离心管中，加等摩尔量(可稍多)的外源DNA片段。 3、加蒸馏水至体积为8l,于45保温5分钟,以使重新退火的粘端解链。将混和物冷却至0。 4、加入10T4 DNA ligase buffer 1l, T4 DNA ligase 0.5l, 混匀后用微量离心机将液体全部甩到管底,于16保温8-24小时。 同时做二组对照反应，其中对照组一只有质粒载体无外源DNA；对照组二只有外源DNA片段没有质粒载体。 二、 E. coli DH5感受态细胞的制备及转化 每组连接反应混和物各取2l转化E. coli DH5

11、感受态细胞。具体方法见第三章。 三、 重组质粒的筛选 1、每组连接反应转化原液取100l用无菌玻棒均匀涂布于筛选培养基上,37下培养半小时以上,直至液体被完全吸收。 2、倒置平板于37继续培养12-16小时,待出现明显而又未相互重叠的单菌落时拿出平板。 3、放于4数小时,使显色完全。 不带有pBS质粒DNA的细胞,由于无Amp抗性,不能在含有Amp的筛选培养基上成活。带有pBS载体的转化子由于具有-半乳糖苷酶活性,在麦康凯筛选培养基上呈现为红色菌落。在X-gal和ITPG培养基上为蓝色菌落。带有重组质粒转化子由于丧失了-半乳糖苷酶活性,在麦康凯选择性培养基和x-gal和ITPG培养基上均为白色

12、菌落。 四、 酶切鉴定重组质粒 用无菌牙签挑取白色单菌落接种于含Amp 50g/ml的 5ml LB液体培养基中,37下振荡培养12小时。使用煮沸法快速分离质粒DNA直接电泳，同时以煮沸法抽提的pBS质粒做对照，有插入片段的重组质粒电泳时迁移率较pBS慢。再用与连接未端相对应的限制性内切酶进一步进行酶切检验。还可用杂交法筛选重组质粒。 注意 1、DNA连接酶用量与DNA片段的性质有关，连接平齐末端，必须加大酶量，一般使用连接粘性末端酶量的10-100倍。 2、在连接带有粘性末端的DNA片段时，DNA浓度一般为2-10mg/ml，在连接平齐末端时，需加入DNA浓度至100-200mg/ml。 3

13、、连接反应后，反应液在0储存数天，-80储存2个月，但是在-20冰冻保存将会降低转化效率。 4、粘性末端形成的氢键在低温下更加稳定，所以尽管T4 DNA连接酶的最适反应温度为37，在连接粘性末端时，反应温度以10-16为好，平齐末端则以15-20为好。 5、在连接反应中，如不对载体分子进行去5磷酸基处理，便用过量的外源DNA片段，这将有助于减少载体的自身环化，增加外源DNA和载体连接的机会。 6、麦康凯选择性琼脂组成的平板，在含有适当抗生素时，携有载体DNA的转化子为淡红色菌落，而携有带插入片段的重组质粒转化子为白色菌落。该产品筛选效果同蓝白斑筛选，且价格低廉。但需及时挑取白色菌落，当培养时间

14、延长，白色菌落会逐渐变成微红色，影响挑选。 7、X-gal是5-溴-4-氯-3-吲哚-b-D-半乳糖的DNA片段。1个单位限制性内切酶是指在最适条件下，在50l体积1小时内完全切开1g噬菌体DNA所需的酶量。不同的限制性内切酶生产厂家往往推荐使用截然不同的反应条件，甚至对同一种酶也如此。但是，几乎所有的生产厂家都对其生产的酶制剂优化过反应条件，因此购买的内切酶说明书上均有其识别序列和切割位点，同时提供有酶切缓冲液和最适条件，使得酶切反应变得日益简单。 一、限制性内切酶对DNA消化的一般方案 1.限制性内切酶反应一般在灭菌的0.5ml离心管中进行。 2.20l体积反应体系如下： DNA 0.2-

15、1 g 10酶切buffer 2.0 l 限制性内切酶 1-2 u 加ddH2O 至 20 l 限制性内切酶最后加入，轻轻混匀，稍加离心，放置于最适温度水浴并按所需的时间温育，一般为37水浴消化1hr。 3.用于回收酶切片段时，反应总体积可达50-200l，各反应组分需相应增加。 4.多种酶消化时若缓冲液条件相同，可同时加入；否则，先做低温或低盐的酶消化，再做高温或高盐的酶消化。 5.酶切结束时，加入0.5M EDTA使终浓度达10mM，以终止反应。或将反应管在65水浴放置10min以灭活限制性内切酶活性。 6.如消化反应体积过大，电泳时加样孔盛不下，可加以浓缩：终止反应后，加入0.6体积的5

16、M乙酸铵和2倍体积无水乙醇，在冰上放置5min，然后于4离心12000g 5min。倾去含大部分蛋白质的上清液。于室温晾干DNA沉淀后溶于适量TE中。 7.如要纯化消化后的DNA，可用等体积酚/氯仿和氯仿各抽提一次，再用乙醇沉淀。 二、电泳检测 取质粒酶切产物适量，加适当loading buffer混匀上样，以未经酶切的质粒或/和酶切的空载体作对照，采用 1-5V/cm的电压，使DNA分子从负极向正极移动，至合适位置取出置紫外灯下检测，摄片。 三、注意事项 1. 浓缩的限制性内切酶可在使用前以1限制酶缓冲液稀释，切勿用水稀释以免酶变性。 2. 购买的限制性内切酶多保存于50%甘油中，于-20是

17、稳定的。进行酶切消化时，将除酶以外的所有反应成分加入后即混匀，再从-20冰箱中取出酶，立即放置于冰上。每次取酶时都应更换一个无菌吸头，以免酶被污染。加酶的操作尽可能快，用完后立即将酶放回-20冰箱。 3.尽量减少反应体积，但要确保酶体积不超过反应总体积的10%，否则酶活性将受到甘油的抑制。 4.通常延长时间可使所需的酶量减少，在切割大量DNA时可用。在消化过程中可取少量反应液进行微量凝胶电泳以检测消化进程。 5.注意星号酶切活力。 目的基因的亚克隆 所谓亚克隆就是对已经获得的目的DNA片段进行重新克隆，其目的在于对目的DNA进行进一步分析，或者进行重组改造等。 亚克隆的基本过程包括：(1)目的

18、DNA片段和载体的制备；(2)目的DNA片段和载体的连接；(3)连接产物的转化；(4)重组子筛选。 一、试剂准备 1LB液体培养基：胰化蛋白胨10g，酵母提取物 5g，NaCl 10g，2加ddH2O 至1000ml，完全溶解，分装小瓶，15lbf/in高压灭菌20min。 2 21.5%琼脂LB固体培养基: 称取1.5g琼脂粉放入300ml锥形瓶,加100ml LB，15 lbf/in高压灭菌20min，稍冷却，制备平皿。 3IPTG、X-Gal 240.1M MgCl2 ：15 lbf/in高压灭菌20min，0冰浴备用。 250.1M CaCl2：15 lbf/in高压灭菌20min，0

19、冰浴备用。 6限制性核酸内切酶、T4 DNA连接酶。 二、目的DNA片段和载体的制备 选择适宜的限制性核酸内切酶，消化已知目的DNA和载体，获得线性DNA，用于重组。根据目的DNA和载体的具体情况，选择一种或者两种适当的限制酶切割，分别产生对称性粘性末端、不对称粘性末端、平端。在亚克隆时，首选不对称相容末端连接，次选对称性粘性相容性末端连接，由于平末端连接效率较低，通常很少采用。但有时目的片段的末端与载体不匹配 ，一般先将不匹配末端补平，然后再以平末端连接。 三、利用T4 DNA连接酶进行目的DNA片段和载体的体外连接 连接要求和结果 外源DNA片段末端性质 连接要求 两种限制酶消化后，需纯化

20、载体以提高连接效率 线形载体DNA常需磷酸酶脱磷处理 连接结果 载体与外源DNA连接处的限制酶切位点常可保留；非重组克隆的背景较低；外源DNA可以定向插入到载体中。 载体与外源DNA连接处的限制酶切位点常可保留；重组质粒会带有外源DNA的串联拷贝；外源DNA会以两个方向插入到载体中。 不对称粘性末端 对称性粘性末端 平端 载体与外源DNA连接处的限制酶切位点消失；要求高浓度的重组质粒会带有外源DNA的串联拷贝；非重组DNA和连接酶 克隆的背景较高 。 带有相同末端(平端或粘端)的外源DNA片段必须克隆到具有匹配末端的线性质粒载体中,但是在连接反应时,外源DNA和质粒都可能发生环化,也有可能形成

21、串联寡聚物。因此，必须仔细调整连接反应中两个DNA 的浓度，以便使“正确”连接产物的数量达到最佳水平，此外还常常使用碱性磷酸酶去除5磷酸基团以抑制载体DNA的自身环化。利用T4 DNA连接酶进行目的DNA片段和载体的体外连接反应，也就是在双链DNA 5磷酸和相邻的3羟基之间形成新的共价键。如载体的两条链都带有5磷酸，可形成4个新的磷酸二酯键；如载体DNA已脱磷，则只能形成2个新的磷酸二酯键，此时产生的重组DNA带有两个单链缺口，在导入感受态细胞后可被修复。 T4 DNA连接酶对目的DNA片段和载体连接的一般方案 1连接反应一般在灭菌的0.5ml离心管中进行。 210l体积反应体系中：取载体50

22、-100ng，加入一定比例的外源DNA 分子，补足ddH2O 至8l。 3轻轻混匀，稍加离心，56水浴5min后，迅速转入冰浴。 4加入含ATP的10Buffer 1l，T4 DNA连接酶合适单位， 用ddH2O 补至10l，稍加离心，在适当温度连接8-14hr。 四、连接产物的转化 1.感受态细胞的制备 保存于-70的DH5用接种环划菌于1.5%琼脂平板上，37恒温倒置培养至单菌落出现。 挑取单菌落，接种于2.0ml LB液体培养基中，37恒温，250g振荡培养过夜。 取0.5ml 过夜培养液，接种于100ml LB液体培养基中，37振荡培养2-2.5hr，至OD600为0.4-0.5时，放

23、置于4冰箱冷却1-2hr。 将培养液分入两个50ml离心管中，4离心，4000g10min，弃去上清，用冰浴的0.1M MgCl2 25ml悬浮30min。 4离心,4000g10min，弃去上清，加入冰浴的0.1M CaCl2-甘油溶液1ml悬浮。 以100l/管分装入1.5ml离心管中，-70冻存备用。 67 注：此法制备感受态细胞，可使每微克超螺旋质粒DNA产生510-210个菌落，这样的转化效率足以满足所有在质粒中进行的常规克隆的需要，制备的感受态细胞可贮存于-70，但保存时间过长会使转化效率在一定程度上受到影响，一般三个月以内转化效率无多大改变。 2. 连接产物的转化 取100l贮存

24、于-70钙化菌，冰浴化开；+ 加入适量连接产物，待胶表面没有液体流动时，37温箱倒置培养12-16hr。 五、重组子的筛选 根据载体的遗传特征筛选重组子，如-互补、抗生素基因等。现在使用的许多载体都带有一个大肠杆菌的DNA的短区段，其中有-半乳糖苷酶基因的调控序列和前146个氨基酸的编码信息。在这个编码区中插入了一个多克隆位点，它并不破坏读框，但可使少数几个氨基酸插入到-半乳糖苷酶的氨基端而不影响功能，这种载体适用于可编码-半乳糖苷酶C端部分序列的宿主细胞。因此，宿主和质粒编码的片段虽都没有酶活性，但它们同时存在时，可形成具有酶学活性的蛋白质。这样，lacZ基因在缺少近操纵基因区段的宿主细胞与

25、带有+完整近操纵基因区段的质粒之间实现了互补，称为-互补。由-互补而产生的LacZ细菌在诱导剂IPTG的作用下，在生色底物X-Gal存在时产生蓝色菌落，因而易于识别。然而，当外源DNA插入到质粒的多克隆位点后，几乎不可避免地导致无-互补能力的氨基端片段，使得带有重组质粒的细菌形成白色菌落。这种重组子的筛选，又称为蓝白斑筛选。如用蓝白斑筛选则经连接产物转化的钙化菌平板37温箱倒置培养12-16hr后，有重组质粒的细菌形成白色菌落。 六、注意事项 1. 目的DNA片段制备、回收、纯化时，应避免外来DNA污染。 2. 不同厂家生产的T4 DNA连接酶反应条件稍有不同，但其产品说明书上均有最适反应条件

26、，包括对不同末端性质DNA分子连接的T4 DNA连接酶的用量、作用温度、时间等。同时提供有连接酶缓冲液，其中多已含有要求浓度的ATP，应避免高温放置和反复冻融使其分解。 2. 连接产物的转化：细菌细胞经特殊试剂处理后在适当的条件下具有接收外源DNA的能力，因此可将上述连接产物通过热刺激或电脉冲转化感受态细胞，当细菌大量增殖的同时，导入的重组DNA也得到增殖。 23. 制备感受态细胞所用离心管、培养瓶最好经酸碱处理或使用新的，15 lbf/in高压灭菌20min。 5. 白色菌落中重组质粒内插入片段是否是目的片段需通过鉴定。 原核表达 将克隆化基因插入合适载体后导入大肠杆菌用于表达大量蛋白质的方

27、法一般称为原核表达。这种方法在蛋白纯化、定位及功能分析等方面都有应用。大肠杆菌用于表达重组蛋白有以下特点：易于生长和控制；用于细菌培养的材料不及哺乳动物细胞系统的材料昂贵；有各种各样的大肠杆菌菌株及与之匹配的具各种特性的质粒可供选择。但是，在大肠杆菌中表达的蛋白由于缺少修饰和糖基化、磷酸化等翻译后加工，常形成包涵体而影响表达蛋白的生物学活性及构象。 表达载体在基因工程中具有十分重要的作用，原核表达载体通常为质粒，典型的表达载体应具有以下几种元件： 选择标志的编码序列； 可控转录的启动子； 转录调控序列(转录终止子，核糖体结合位点)； 一个多限制酶切位点接头； 宿主体内自主复制的序列。 原核表达

28、一般程序如下： 获得目的基因准备表达载体将目的基因插入表达载体中转化表达宿主菌诱导靶蛋白的表达表达蛋白的分析扩增、纯化、进一步检测 一、试剂准备 1、LB培养基。 2、100mM IPTG：2.38g IPTG溶于100ml ddH2O中,0.22m滤膜抽滤，-20保存。 二、操作步骤 获得目的基因 1、通过PCR方法：以含目的基因的克隆质粒为模板，按基因序列设计一对引物，PCR循环获得所需基因片段。 2、通过RT-PCR方法：用TRIzol法从细胞或组织中提取总RNA，以mRNA为模板，逆转录形成cDNA第一链，以逆转录产物为模板进行PCR循环获得产物。 构建重组表达载体 1、载体酶切：将表

29、达质粒用限制性内切酶进行双酶切，酶切产物行琼脂糖电泳后，用胶回收Kit或冻融法回收载体大片段。 2、PCR产物双酶切后回收，在T4DNA连接酶作用下连接入载体。 获得含重组表达质粒的表达菌种 1、 将连接产物转化大肠杆菌DH5，根据重组载体的标志作筛选，挑取单斑，碱裂解法小量抽提质粒，双酶切初步鉴定。 2、 测序验证目的基因的插入方向及阅读框架均正确,进入下步操作。否则应筛选更多克隆，重复亚克隆或亚克隆至不同酶切位点。 3、 以此重组质粒DNA转化表达宿主菌的感受态细胞。 诱导表达 1、 挑取含重组质粒的菌体单斑至2ml LB中37过夜培养。 2、按150比例稀释过夜菌，一般将1ml菌加入到含

30、50mlLB培养基的300ml培养瓶中, 37震荡培养至OD6000.4-1.0。 3、取部分液体作为未诱导的对照组,余下的加入IPTG诱导剂至终浓度0.4mM作为实验组,两组继续37震荡培养3hr。 4、分别取菌体1ml, 离心12000g30s收获沉淀，用100l 1%SDS重悬，混匀, 7010min。 5、离心12000g1min，取上清作为样品,可做SDS-PAGE等分析。 三 、注意事项 1、选择表达载体时，要根据所表达蛋白的最终应用考虑。如为方便纯化，可选择融合表达；如为获得天然蛋白，可选择非融合表达。 2、融合表达时在选择外源DNA同载体分子连接反应时，对转录和转译过程中密码结

31、构的阅读不能发生干扰。 表达蛋白的SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分析 一、原理 细菌体中含有大量蛋白质，具有不同的电荷和分子量。强阴离子去污剂SDS与某一还原剂并用，通过加热使蛋白质解离，大量的SDS结合蛋白质，使其带相同密度的负电荷，在聚丙烯酰胺凝胶电泳上，不同蛋白质的迁移率仅取决于分子量。采用考马斯亮兰快速染色，可及时观察电泳分离效果。因而根据预计表达蛋白的分子量，可筛选阳性表达的重组体。 二、试剂准备 1、30%储备胶溶液：丙烯酰胺29.0g，亚甲双丙烯酰胺1.0g，混匀后加ddH2O，37C溶解,定容至100ml, 棕色瓶存于室温。 2、1.5M Tris-HCl(pH 8.0)：Tris

32、 18.17g加ddH2O溶解, 浓盐酸调pH至8.0,定容至100ml。 3、1M Tris-HCl(pH 6.8)：Tris 12.11 g加ddH2O溶解, 浓盐酸调pH至6.8,定容至100ml。 4、10% SDS：电泳级SDS 10.0 g加ddH2O 68助溶,浓盐酸调至pH 7.2,定容至100ml。 5、10电泳缓冲液(pH 8.3)：Tris 3.02 g，甘氨酸 18.8 g，10% SDS 10ml加ddH2O溶解, 定容至100ml。 6、10%过硫酸铵： 1gAP加ddH2O至10ml。 7、2SDS电泳上样缓冲液：1M Tris-HCl (pH 6.8)2.5ml

33、，b-巯基乙醇1.0ml，SDS 0.6 g，甘油 2.0ml，0.1%溴酚兰 1.0ml，ddH2O 3.5ml。 8、考马斯亮兰染色液：考马斯亮兰 0.25 g，甲醇225ml，冰醋酸 46ml，ddH2O 225ml。 9、脱色液:甲醇、冰醋酸、ddH2O以316配制而成。 二、操作步骤 采用垂直式电泳槽装置 聚丙烯酰胺凝胶的配制 1、 分离胶(10%)的配制: ddH2O 4.0ml 30%储备胶 3.3ml 1.5M Tris-HCl 2.5ml 10% SDS 0.1ml 10% AP 0.1ml 取1ml上述混合液,加TEMED(N,N,N,N-四甲基乙二胺)10l封底,余加TE

34、MED 4l ,混匀后灌入玻璃板间，以水封顶，注意使液面平。 2、 积层胶的配制： ddH2O 1.4 ml 30%储备胶 0.33 ml 1M Tris-HCl 0.25 ml 10%SDS 0.02 ml 10%AP 0.02 ml TEMED 2 l 将分离胶上的水倒去,加入上述混合液,立即将梳子插入玻璃板间，完全聚合需15-30min。 样品处理：将样品加入等量的2SDS上样缓冲液，100加热3-5min，离心12000g1min，取上清作SDS-PAGE分析，同时将SDS低分子量蛋白标准品作平行处理。 上样: 取10l诱导与未诱导的处理后的样品加入样品池中,并加入20l低分子量蛋白标

35、准品作对照。 电泳:在电泳槽中加入1电泳缓冲液，连接电源，负极在上，正极在下，电泳时，积层胶电压60V,分离胶电压100V,电泳至溴酚兰行至电泳槽下端停止。 染色:将胶从玻璃板中取出，考马斯亮兰染色液染色，室温4-6hr。 O 脱色:将胶从染色液中取出,放入脱色液中,多次脱色至蛋白带清晰。 凝胶摄像和保存：在图像处理系统下将脱色好的凝胶摄像，结果存于软盘中，凝胶可保存于双蒸水中或7%乙酸溶液中。 三、注意事项 1、实验组与对照组所加总蛋白含量要相等。 2、为达到较好的凝胶聚合效果，缓冲液的pH值要准确，10%AP在一周内使用。室温较低时，TEMED的量可加倍。 3、未聚合的丙烯酰胺和亚甲双丙烯

36、酰胺具有神经毒性，可通过皮肤和呼吸道吸收，应注意防护。 表达蛋白的分离与纯化 大肠杆菌表达蛋白以可溶和不溶两种形式存在，需要不同的纯化策略。现在，许多蛋白质正在被发现而事先并不知道它们的功能，这些自然需要将蛋白质分离出来后，进行进一步的研究来获得。分析蛋白质的方法学现已极大的简化和改进。必须承认，蛋白质纯化比起DNA克隆和操作来是更具有艺术性的，尽管DNA序列具有异乎寻常的多样性，但它却有标准的物理化学性质，而每一种蛋白质则有它自己的由氨基酸序列决定的物理化学性质。正是蛋白质间的这些物理性质上的差异使它们得以能进行纯化但这也意味着需要对每一种待纯化的蛋白质研发一套新的方法。所幸的是，尽管存在这

37、种固有的困难，但现已有多种方法可以利用，蛋白质纯化策略也已实际可行。目前，待研究蛋白或酶的基因的获得已是相当普遍的事。可诱导表达系统特别是Studier等发展的以噬菌体T7RNA聚合酶为基础的表达系统的出现使人们能近乎常规地获得过表达，表达水平可达细胞蛋白的2%以上，有些甚至高达50%。 一、可溶性产物的纯化 试剂准备 采用T7 Tag Affinity Purification Kit 1T7Tag抗体琼脂。 2B/W缓冲液：4.29mM Na2HPO4，1.47 mM KH2PO4，2.7 mM KCl，3. 0.137mM NaCl，1%吐温-20，pH7.3。 4. 洗脱缓冲液: 0.

38、1M柠檬酸，pH2.2。 5. 中和缓冲液：2M Tris，pH10.4。 1. PEG 20000。 操作步骤 1.100ml 含重组表达质粒的菌体诱导后，离心5000g5min，弃上清，收获菌体，用10ml预冷的B/W缓冲液重悬。 2. 重悬液于冰上超声处理，直至样品不再粘稠，4离心 14000g30min，取上清液，0.45m膜抽滤后作为样品液。 3. 将结合T7Tag抗体的琼脂充分悬起，平衡至室温，装入层析柱中。 4. B/W缓冲液平衡后样品液过柱。 5. 10ml B/W缓冲液过柱，洗去未结合蛋白。 6. 用5ml洗脱缓冲液过柱，每次1ml，洗脱液用含150l中和缓冲液的离心管收集，

39、混匀后置于冰上，直接SDS-PAGE分析。 7. 将洗脱下来的蛋白放入透析袋中，双蒸水透析24hr，中间换液数次。 8. 用PEG 20000浓缩蛋白。 注意事项 蛋白在过层析柱前，要0.45m膜抽滤，否则几次纯化后，柱子中会有不溶物。 二、包涵体的纯化 包涵体是外源基因在原核细胞中表达时，尤其在大肠杆菌中高效表达时，形成的由膜包裹的高密度、不溶性蛋白质颗粒，在显微镜下观察时为高折射区，与胞质中其他成分有明显区别。包涵体形成是比较复杂的，与胞质内蛋白质生成速率有关，新生成的多肽浓度较高，无充足的时间进行折叠，从而形成非结晶、无定形的蛋白质的聚集体；此外，包涵体的形成还被认为与宿主菌的培养条件，

40、如培养基成分、温度、pH值、离子强度等因素有关。细胞中的生物学活性蛋白质常以可融性或分子复合物的形式存在，功能性的蛋白质总是折叠成特定的三维结构型。包涵体内的蛋白是非折叠状态的聚集体，不具有生物学活性，因此要获得具有生物学活性的蛋白质必须将包涵体溶解，释放出其中的蛋白质，并进行蛋白质的复性。包涵体的主要成分就是表达产物，其可占据集体蛋白的40%95%，此外，还含有宿主菌的外膜蛋白、RNA聚合酶、RNA、DNA、脂类及糖类物质，所以分离包涵体后，还要采用适当的方法进行重组蛋白质的纯化。 试剂配制 1缓冲液A：50mM Tris-HCl,2mM EDTA,100mM NaCl。 2缓冲液B：50m

41、M Tris-HCl,1mM EDTA,100 mM NaCl,1%NP-40。 3缓冲液：50mM Tris-HCl ,2mM EDTA,100 mM NaCl,0.5%Triton X-100(V/V),4M脲素。 4缓冲液：50M Tris-HCl,2mM EDTA,100 mM NaCl,3% Triton X-100 。 1缓冲液：50mM Tris-HCl,2mM EDTA,100 mM NaCl,0.5%Triton X-100,2M 盐酸胍。 5缓冲液C：8M脲素，10mM-巯基乙醇，100 mM Tris-HCl，2mM EDTA及脱氧胆酸钠。 操作步骤 1用缓冲液A漂洗菌体

42、细胞, 离心6000g15min，收集菌体细胞，重复此步骤，将菌体细胞再在缓冲液A中洗涤一次。 2将漂洗过的菌体细胞悬浮于缓冲液B中，超声破碎，镜检，破碎率高于95%，离心1500g30min，收集包涵体沉淀。 3将包涵体沉淀用缓冲液、缓冲液、缓冲液分别超声洗涤一次，1500g 离心收集包涵体沉淀。 4包涵体的溶解：用含高浓度脲素的缓冲液室温放置30min，然后离心1500g30min，留上清。将溶解后的蛋白质适当稀释，磁力搅拌，透析过夜。 5溶解后的包涵体蛋白可通过亲和层析进一步纯化。 表达蛋白的生物学活性的检测 一、MTT比色法检测细胞活性 原理 活细胞内线粒体琥珀酸脱氢酶能催化无色的MT

43、T形成蓝色的甲肷，其形成的量与活细胞数和功能状态呈正相关。对细胞活力有影响的表达蛋白活性检测可以通过MTT比色法进行。 试剂准备 1、 青链霉素溶液：青霉素100万U，链霉素100万U，溶于100mlddH2O中, 抽滤除菌。 2、 L15基础培养基：1000mlL15培养基，加2g碳酸氢钠，10ml 100X青链霉素，5mlHEPES。 3、 MTT液：5mg/ml溶于L15基础培养基。 4、 SDS处理液：20gSDS，50l二甲基甲酰胺，加双蒸水50ml溶解。 5、 L-多聚赖氨酸：50g溶于1ml双蒸水中。 6、 L15基础培养基溶解的不同浓度的蛋白液。 操作步骤 1、 无菌条件下取新

44、生一天的SD大鼠背根神经节。 2、 镜下去除神经根和外膜，放入1ml 0.1%胶原酶中37消化30min，每5min摇匀一次。 3、 洗去胶原酶，吹打分散后，接种于预先涂有L-多聚赖氨酸的96孔培养板中，每孔含100l无血清L15培养基，细胞约800个。 4、 实验组分别加入纯化的表达蛋白，阴性对照加入等体积表达蛋白的溶剂。 5、 37 5%CO2培养48hr后，每孔加入10l MTT，37 5%CO2孵育4hr。 6、 加入100l 20%的SDS处理液，37孵育20hr。 7、 用EL800微孔酶标仪测定OD570值，数据分析。 二、DRG无血清培养检测促神经生长作用 操作步骤： 1、无菌

45、条件下取新生一天的SD大鼠DRG。 2、镜下去除神经根和外膜，接种于预先涂有L-多聚赖氨酸的96孔培养板中，每孔1个DRG。 3、待DRG贴壁后加入100l无血清L15基础培养基，实验组加入纯化的表达蛋白，阴性对照加入等体积的溶解表达蛋白的溶剂。 4、37 5%CO2培养，每天在Olympus倒置显微镜下观察细胞的生长情况，并进行测量，其数据作统计分析。 二、注意事项 1、MTT有毒，注意防护。 2、单个DRG贴壁实验操作难度较大，需仔细耐心。 副溶血弧菌外膜蛋白K基因的克隆及原核表达的研究 张军 指导老师：胡忠、伦镜盛 摘要 针对副溶血弧菌外膜蛋白K(Outer membrane prote

46、in K，Omp K)的基因序列设计一对引物，利用 PCR 反应从副溶血弧菌基因组中扩增出一段约 820 bp 的序列。将其连接到 pET-32a 载体,测序结果证明该序列是副溶血弧菌外膜蛋白 Omp K 基因。用PCR 方法去除其N端信号肽序列,定向克隆到原核表达载体 pET-32a 构建重组表达质粒，并转化到宿主大肠杆菌 DH5 中1。酶切、测序验证结果表明：成功获得了 759 bp 的 Omp K基因序列。后再次转化载体入高效表达宿主大肠杆菌 Rosetta 中，IPTG 诱导后能够高效表达分子量约为 42 kD 的融合蛋白。提取总蛋白后取特异表达条带进行 Western- immunoblotting 蛋白免疫印记分析。分析显示能够发生特异反应,推测所表达的特异蛋白为 Omp K。 关键词：副溶血弧菌; Omp K; 原核表达 Clonin