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1、RNA干扰技术基本原理与应用,什么是RNA干扰,RNA干扰(RNA interference,RNAi),又称转录后基因沉默(post-transcriptional gene silencing,PTGS),是指将特异性同源双链RNA(dsRNA)导入到细胞内,使目的基因的不表达或表达水平下降.,2001、2002年连续被Science评为年度十大成就!,目前应用的基因干扰技术,DNA水平的基因干扰技术基因敲除技术寡核苷酸与双链DNA 杂交采用多胺等小分子识别并阻遏特定转录因子,目前应用的基因干扰技术,mRNA水平的基因干扰技术用反义RNA 技术阻遏翻译过程,破坏内源性mRNA设计寡核苷酸来
2、破坏与mRNA 结合的蛋白质,使mRNA 不稳定双链RNA 干扰技术(RNAi),RNAi的发现和发展历程,1984 年,Jonathan 研究小鼠L 细胞时发现反义mRNA 会干扰同源基因的表达,机制不清1990年 Jorgensen等 矮牵牛颜色加深实验“共抑制(co-suppresion)”,RNAi的发现和发展历程,1995年 Su Guo 和Ken Emphues 反义RNA阻断秀丽小杆线虫par-1基因的表达 实验 首次发现 RNA干扰现象1998年 Andrew Fire和Craig Mello 发现单链RNA抑制作用较弱,而纯化的dsRNA可高效、特异地抑制基因的表达 Natu
3、re1998;391:806-11 正式提出RNA干扰的概念,RNAi的发现和发展历程,1999年 Tuschl等 报道在哺乳动物中也存在RNAi2001 年 Berstein 等 提出只有22 核苷酸dsRNA才有特异性的阻断效应,并发现体内分解dsRNA 为siRNAs(short/small interfering RNA)的DICER 酶,RNAi的发现和发展历程,2002 年 Novina 等 用RNAi 技术实现了对HIV-1 病毒的阻抑2004年 Morris 等 用RNAi技术实现了对人细胞基因的抑制 Science 2004(August 27);305:1289-1292,
4、RNAi的主要特点和优势,诱导转录后水平的基因沉默具有高度的特异性抑制基因表达的高效性可在不同细胞之间传递甚至传到子代中去“基因沉默系统化”,siRNA 与反义寡核苷酸、核酶、脱氧核酶,共同点 特异性 靶向性,siRNA 与反义寡核苷酸、核酶、脱氧核酶,不同点独特的双链结构需要Dicer、RdRp、解旋酶、激酶等协同因子siRNA 本身无催化活性在细胞内可能具有相对的稳定性具有一定的可遗传性,RNAi的主要过程,启动阶段 dsRNA(500nt左右最佳)被Dicer 酶特异性识别,以一种ATP依赖的方式逐步切割成siRNA长度:21-25nt结构:3端悬垂两个未配对的碱基UU,细胞中内源性ds
5、RNA的形成,基因组中DNA 反向重复序列的转录产物同时转录反义和正义RNA 病毒RNA 复制中间体以单链RNA 为模板由细胞或病毒的RNA 依赖RNA 聚合酶(RdRp)催化合成dsRNA,Dicer酶,RNAase III超家族成员。结构中包括一个螺旋酶结构域,两个RNA酶结构域,一个双链RNA结合位点对单链RNA没有活性对200500nt的dsRNA作用效果最好,能降解成25nt左右的siRNA广泛存在,RdRp(RNA dependent RNA polymerase),使异常的RNA转变为dsRNA参与细胞内dsRNA和siRNA的扩增siRNA与靶mRNA 的结合可激活RdRp,形
6、成大量的dsRNA,RNAi的主要过程,效应阶段RNA诱导沉默复合体(RNA-induced silencing complex,RISC)的形成RISC的激活:ATP依赖的解双链过程在siRNA反义链的指导下(靶序列的识别),RISC特异性切 割、降解靶mRNA,导致基因表达失活,RNAi技术的实验方法,siRNA的设计原则序列大小 19-21nt,最好以A或G开始从mRNA的AUG开始,寻找AA二连序列,作为潜在的RNAi靶位点不要针对5和3端非编码区(untranslated regions,UTRs),RNAi技术的实验方法,siRNA的设计原则设计24个序列,BLAST 比对基因序列
7、以确保序列设计的特异性优先选择 GC 含量30-50%的序列设计适当的阴性对照序列,阴性对照序列的设计,特异性siRNA中的碱基进行随机排列,且行BLAST基因比对 AGCCTTAGCTTAAGTCCTAG ATTCGTGCTCAATGCAATCG在特异性siRNA引入12个错配碱基 AGCCTTAGCTTAAGTCCTAG AGCCTTAGTTTAAATCCTAG,目标序列筛选的相关网站,http:/http:/http:/http:/http:/http:/katahdin.cshl.org:9331/RNAi/html/rnai.html,查找已经证实的siRNA的网站,http:/=4
8、9http:/=Published,siRNA的制备方法,体外制备方法化学合成siRNA体外转录获取siRNA利用Dicer或 RNase消化长的dsRNA成siRNA,化学合成法制备siRNA,优点:纯度高 合成量不受限 能被标记缺点:价格昂贵、合成周期长用途:已经找到最有效的siRNA的情况下,需要大量siRNA进行研究,体外转录法制备siRNA,优点:简单 成本低 速度快 毒性小 稳定性好 缺点:反应规模和量始终有一定的限制用途:筛选siRNAs,特别是需要制备多种 siRNAs,消化法(“siRNAs 鸡尾酒”),优点:无需检测或筛选多个siRNA序列产生多种 siRNAs 混合体,保
9、证有效的目的基因沉默缺点:有可能引发非特异的基因沉默 用途:快速而经济地研究某个基因功能缺失的表型,siRNA的制备方法,细胞内制备方法依赖表达质粒或病毒载体在细胞内获取siRNA通过PCR介导的siRNA表达试剂盒获取siRNA,siRNA载体,依赖RNA聚合酶III 启动子(pol III),操纵一段小的发夹siRNA在哺乳动物细胞中的表达。人源U6启动子 鼠源的U6启动子 人H1启动子pol III可在细胞中表达许多的小分子RNA,通过添加一串(36个)U来终止转录的需要订购2段编码短发夹RNA序列的DNA单链再克隆到载体中,表达载体法制备siRNA,优点:可以进行较长期研究。载体可以在
10、细胞中持续抑制靶基因达数星期或更久缺点:需要进行克隆,周期长,质粒载体表达效率较低用途:唯一可以用于长期基因沉寂研究的方法,基于PCR的siRNA表达框架(SECs),组成:RNA pol III启动子 发夹结构siRNA RNA pol III终止位点制备:PCR,无需克隆和测序,用SECs制备siRNA,优点:可直接由PCR得到,方法简便,时间短在PCR片段两端添加酶切位点,筛选出 最有效的siRNA可用于构建表达载体可以用来筛选特定研究体系中启动子和siRNA的最适搭配,用表达框架制备siRNA,缺点:PCR产物很难转染到细胞中不能进行序列测定,PCR和DNA合成时可能产生的误读不能被发
11、现导致结果不理想 用途:筛选siRNA序列在将siRNA克隆到载体前筛选最佳启动子,shRNA(short hairpin RNA)文库,Nature 2004;428:427-431(25 March)针对:9,610 human genes 5,563 mouse genes 构建成:28,000个shRNA表达盒(cassettes)商品化试剂盒:Expression Arrest(美国冷泉港实验室 Open Biosystems公司)网上数据库中选择特定的shRNA克隆,无需再耗时耗力进行siRNA的设计、合成和验证过程,CAM:氯霉素抗性基因 hr:同源重组位点Barcode:每个s
12、hRNA独特的识别序列 MSCV:病毒载体骨架 PKG-Puro:哺乳动物细胞中载体稳定性的选择Kan、oriT、RK6:逆转录病毒信号序列,siRNA转染细胞,.磷酸钙共沉淀 电穿孔法 DEAE-葡聚糖和polybrene 机械法:显微注射和基因枪 阳离子脂质体试剂,提高转染效率的方法,纯化的siRNA避免使用抗生素避免RNA酶污染 较低传代数的细胞 合适的转染试剂 合适的阳性对照荧光标记的siRNA,RNAi技术的应用,基因组功能研究的新方法研究信号传导通路的新途径 开展基因治疗的新策略(抗病毒、抗肿瘤等)筛选药物靶点的新工具,RNAi技术抗病毒,作用阻止病毒入侵、抑制病毒的复制和转录自然
13、界中普遍存在在医学上的应用RNA病毒:如HIV、HCV、脊髓灰质炎病毒DNA病毒:如HBV,RNAi技术阻止HIV的入侵,Novina将针对CD4的dsRNA导入 能表达CD4、CCR 5、CXCR4的M agi2CCR 5 细胞系),能使细胞表面CD4 表达减少75%;转染后60 小时后,再用H IV 感染,结果发现CD4-siRNA 转染的细胞很少有包涵体出现其它试验的受体:CCR 5、CXCR4,RNAi技术抑制HIV的复制,将HIV-1编码rev的基因和同源的dsRNA共转染到293细胞中,rev基因的表达被显著抑制siRNA抑制HIV rev-EGFP的表达,其抑制率可达到90;而反义RNA,核酶组与对照组无显著差异,RNAi技术抑制HCV的复制,RNAi技术抑制HBV的复制,HBV是DNA病毒,但是其复制过程需经过逆转录的过程。针对HBV的S,C,X,P基因序列及DR1,DR2等调控元件序列,设计的siRNA可显著抑制HBV的复制和蛋白表达,McCaffrey,et al.Nature Biotech 2003;pp1-6,谢 谢!,