《核酸的研究方法》PPT课件.ppt

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1、核酸的研究方法,核酸的分离、提纯和定量测定,核酸的超速离心,核酸的凝胶电泳,核酸的核苷酸序列测定,DNA聚合酶链式反应(PCR),DNA的化学合成,制备天然核酸必需采用温和的条件,防止过酸、过碱,避免剧烈搅拌,尤其重要的是防止核酸酶的作用,一、核酸的分离、提纯和定量测定,真核DNA以核蛋白(DNP)形式存在,DNP溶于水或高盐溶液(1mol/L NaCl),但不溶于低盐溶液(0.14mol/L NaCl),据此,细胞破碎后采用高盐提取,低盐沉淀,可将DNP与RNA核蛋白分开,提取出DNP。去除蛋白质:水饱和酚,氯仿异戊醇。DNA沉淀:0.3M NaAC-70%乙醇,(一)DNA分离纯化,也可用

2、SDS破碎细胞,蛋白酶K降解蛋白后,苯酚抽提,再用RNase分解除去RNA而获得纯化的DNA。,制备RNA时,最重要的是使RNase灭活:容器用0.1焦碳酸二乙酯(DEPC)处理。然后经过高温处理。DEPC能使蛋白质乙基化而破坏RNase活性;加入强变性剂(如胍盐:可使所有蛋白质变性)使RNase失活;在RNA的反应体系内加入RNase的抑制剂(如RNasin),(二)RNA的分离,用0.14mol/L Nacl使DNP沉淀,上清中即为RNA核蛋白(RNP)。盐酸胍、苯酚等去蛋白用酸性胍盐/苯酚/氯仿抽提:异硫氰酸胍是极强的蛋白质变性剂。后用苯酚和氯仿多次除净蛋白质用胍盐/氯化铯将细胞抽提物进

3、行密度梯度离心,蛋白质在最上面,DNA在中间,RNA沉在底部mRNA的制备:oligo(dT)纤维素(琼脂糖凝胶)亲合层析法,制备RNA的方法:,(三)核酸含量的测定,2、定糖法 RNA:核糖 糠醛 绿色物质(670-680nm)DNA:脱氧核糖+二苯胺兰色物质(595-620nm),苔黑酚/地衣酚,浓HCl,浓硫酸,1、紫外吸收法1个A50g/ml 双链DNA 40g/ml RNA或单链DNA,3、定磷法 核酸含磷量为9.5%1g磷相当于10.5g核酸4、琼脂糖凝胶电泳 溴乙锭能插入DNA分子的碱基对间形成复合物在紫外线照射下溴乙锭发橘红色荧光 荧光强度与DNA含量成正比,细胞或组织中核酸含

4、量测定方法,纯DNA 比值1.8,1.8 Pr、苯酚污染纯RNA 比值2.0,2.0 DNA、Pr、苯酚污染,(四)、核酸纯度的测定,OD260OD280,二、核酸的沉降特性与超速离心,利用超离心技术,可以测定核酸的沉降常数和相对分子质量。密度梯度沉降平衡超离心法在核酸分子构象的研究中应用颇广。DNA分析时,常用氯化铯密度梯度。主要应用于以下方面:核酸密度的测定测定DNA中的G-C含量溶液中核酸构象的研究用于核酸的制备,8M CsCl,45000rpm,16h密度梯度:1.80g/ml1.55g/ml平衡时:浮力密度=CsCl密度=离心力=0+4.22(r2-r02)10-10:未知DNA的密

5、度0:为标准DNA的密度:角速度(弧度/秒)r:样品到转轴的距离r0:已知DNA到转轴的距离,(一)核酸密度的测定,G-C含量与DNA的浮力密度之间呈正比关系,因此可用能用该方法计算DNA碱基成分,计算公式为:=0.1 xG-C+1.658xG-C=(-1.658)10需注意的是:含5-甲基胞嘧啶多的DNA,其实际浮力密度会降低,低于理论值,不能用该公式计算。,(二)测定DNA的G-C含量,RNADNA变性DNA双链DNA 蛋白质,变性程度越大,浮力密度越大,(三)研究核酸的构象,(四)用于核酸的制备,不同构象的核酸(线形、环形、超螺旋),密度和沉降速率不同,用密度梯度离心可以将不同构象DNA

6、、RNA与蛋白质区分开来,利用EB(溴化乙锭)与核酸结合,能在紫外灯下发出荧光的特性,将目的区带收集。,是当前核酸研究中最常用的方法。有许多的优点:简单、快速、灵敏、成本低。常用的有琼脂糖凝胶电泳和聚丙烯酰胺凝胶电泳。,三、核酸的凝胶电泳,(一)琼脂糖凝胶电泳,用于大片段DNA或RNA的分离,精度低,但分离范围广。,电泳迁移率决定于:(1)核酸分子的大小(迁移率与相对分子质量对数成反比)(2)胶浓度(迁移率与胶浓度成反比,常用0.71%)(3)DNA的构象:超螺旋线状分子开环状分子(4)电压(一般5V/cm,电压与迁移率成正比)(5)碱基组成(影响不大)(6)温度(430都可以,常室温进行)琼

7、脂糖凝胶电泳常用于DNA分析;分析RNA时需加入蛋白质变性剂甲醛。电泳完毕用溴化乙锭(0.5g/mL)染色,用紫外光检测,琼脂糖电泳用于DNA分子量的测定,在同一凝胶中加入已知相对分子质量的样品(分子marker),在电泳完成后,通过染色,照相,从照片上比较待测样品的DNA片段与标准样品的中的已知大小片段,可以推测待测未知DNA片段的分子大小。,用于小片段DNA的分析相对分子质量小于1000bp的DNA片断和RNA的电泳。PAGE中一般不含RNase,用于RNA分析时不会分解样品。,(二)聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE),(一)DNA的酶法测定,四、核酸的核苷酸序列测定,英国 Sanger195

8、5 确定牛胰岛素结构,1958 获诺贝尔化学奖1975 设计出DNA测序法,1980 获诺贝尔化学奖合成一系列与待测DNA序列互补的DNA片段群。,末端终止法Sanger2,3双脱氧核苷三磷酸(ddNTP)是DNA合成链延伸的抑制剂。,DNA序列分析仪:四色荧光基团标记的dNTP,(二)DNA的化学法测序:由Maxam和Gilbert所发明。其基本原理是用特异的化学试剂作用于DNA分子中的不同碱基,然后用哌啶切断反应碱基的多核苷酸链。用4组不同的特异反应,可使末端标记的DNA分子切成不同长度的片断,其末端都是该特异的碱基。经变性胶电泳和放射自显影得到测序图谱,4组特异的反应如下:(1)G反应:

9、用硫酸二甲酯DMS使鸟嘌呤上的N7原子甲基化,加热引起鸟嘌呤脱落,多核苷酸链可在此处断裂(2)G+A反应:用甲酸使A和G嘌呤环上的N原子质子化,从而使其糖苷键变得不稳定,再用哌啶使键断裂(3)T+C反应:用肼使T和C的嘧啶环断裂,再用哌啶除去碱基(4)C反应:当有盐存在时,只有C与肼反应,并被哌啶除去。嘧啶使修饰碱基脱落,并使去掉碱基的磷酸二酯键断裂,(三)RNA的测序 RNA的测序方法有3个:(1)用酶特异切断RNA链:胰RNase A:嘧啶核苷酸键米曲霉RNase T1:鸟苷酸核苷酸键黑粉菌RNase U2:腺苷酸核苷酸键多头黏菌RNase Phy I:A、G、U核苷酸键(2)用化学试剂裂

10、解RNA(与DNA化学测序法类似)(3)逆转录成cDNA,1995年K.Mullis发明。基本步骤为:1.设计一对引物以便有效扩增所需要的DNA序列,并尽量减少可能产生的非特异产物2.优化反应体系:包括适量模板、引物、4种dNTP、耐高温的DNA聚合酶和适量Mg2+,五、DNA聚合酶链式反应(PCR),3.选择3个温度进行热循环:变性94,4560s;退火,根据引物的Tm,一般为两引物中较低的Tm值减2,1min;延伸,72,1min。热循环25-30个周期,最后延伸10分钟。4.扩增完成后取出一定量的反应产物,检测扩增结果:先进行凝胶电泳,用溴化乙啶染色,紫外光下检测结果,y=产物;x=扩增效率;n循环次数,PCR技术十分灵敏,扩展效率非常高,通常可扩增106倍,其扩增产量可按下列公式计算。,PCR技术的应用-:(1)遗传病和某些疑难病的诊断以及孕妇的产前检查(2)病原体的检测(3)法医和刑侦鉴定(4)癌基因的检查(5)基因组探针的制备(6)基因组测序、染色体巡视(7)cDNA库的构建(8)基因突变的分析和定位诱变(9)DNA重组(10)基因的分离和克隆,六、DNA的化学合成,P521图15-6固相合成法(亚磷酸三酯法)合成DNA合成方向:3 5端5-OH用二对甲氧三苯甲基(DMT)保护。3-OH用氨基亚磷酸化合物活化碱基上氨基用苯甲酸保护,二对甲氧三苯甲基,

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