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1、医疗器械清洗与消毒中国疾病预防控制中心,美国传染病控制杂志1999年报导: 使用后:外科手术器械生物负荷为: 0103cfu 清洗后: 32%器械表面微生物数量减少 45%器械微生物数量反而增多 23%器械清洗前后无明显变化 此外,微生物类型有变, 常出现水源微生物,表明清洗后器械被再污染。 说明:清洗中存在许多误区,有认识,技术问题。清洗时的环境和操作规程十分重要。,彻底清洗是取得满意消毒效果的关键 自1996年来,各国普遍重视医疗器械消毒灭菌前的彻底清洗,相继出现关于清洗与消毒指南,采用各种专用清洗-消毒机,用于污染医疗器械和用品,清洗和消毒一步完成,减少了医护人员接触污染物品的机会。,清
2、洗 清洗去污是指从物品上去除外来的物质(如土和有机物)常常用水、清洗剂或酶。 残留在器材表面上的有机物和无机物可干扰消毒的效果。干燥在器材上污物难以去除,影响消毒效果。 外科器材应预先浸泡,防止血液干燥,利用清洗剂和酶软化血液,使其容易从器材上去除 。,影响清洗的因素 1)结构复杂物品, 必须尽可能折卸,手工仔细刷洗。 2)污物的性质, 污染微生物的数量和状态。 3)有机物变干,清洗时很难将其彻底去除。 4) 水中加表面活性剂,改变表面张力,加酶裂解有机物 可提高清洗效果。,生物膜 细菌可粘附于物体表面形成生物膜-不同种类细菌的混合群体,它们的生长方式与悬液中的细菌差别很大,对抗菌物质的敏感性
3、降低。 例如:粘附玻璃培养管壁上的绿脓,大肠和金葡菌可在杀灭浓度(悬液)的-内酰胺中生长 硅酮片上的大肠杆菌生物膜可在200mg/L 洗必泰溶液中存活2h,而尿液中的同一细菌可被迅速杀灭。,生物膜 生物膜可在温水、浴疗池、口腔科水管和一些医疗器材 (透镜、导尿管、中心静脉导管 )中形成。生物膜的存在, 对于免疫缺陷和体内放有医疗器材的病人来说, 可能会有严重的后果。 生物膜不易从这些表面上清除。生物膜中细菌不易受消毒剂的作用。 酶类可用于降解生物膜。,清洗的方法 (1)自来水清洗:保湿、去除无机污物,对光滑表面去污效果较好。 (2)清洁剂:对松解干枯污物,配合机械去污效果明显。 (3)酶清洗剂
4、:酶可有效地分解和去除干燥和湿润的污物;分解蛋白质、脂肪和淀粉等, 配合使用自动清洗机或超声波,则清洗效果更佳。,清洗步骤: 分类、浸泡、清洗、自来水漂洗、去离子水漂洗、干燥: 1)手工清洗:复杂物品,如各种内镜、导管等必须手工清洗; 2)清洗器清洗:清洗器一般包括冷水清洗、洗涤剂清洗、漂洗 和最后热水消毒(水温为8093), 3)超声波清洗:主要用于结构精细金属医疗器械,加酶可提 高清洗的效率; 4)自来水漂洗, 然后,去离子水漂洗。 5)干燥:漂洗完毕,应尽快将湿的物品擦干(沥干)或烘干。 临床上常用各种自动清洗消毒机。,清洗消毒器全自动装卸系统,多见的自动清洗机: 超声波清洗器(ultr
5、asonic cleaner)是由声波能的空化作用(cavitation)。当超声波清洗液无抗菌作用时,污染菌存在于清洗液中。 洗涤灭菌器(washer-sterilizer)类似蒸汽灭菌器,箱体里充满水和清洗剂, 蒸汽起到搅动作用。物品经过清洗后, 有个短时间蒸汽灭菌周期。另一种洗涤灭菌器是利用旋转喷射器的洗涤周期,然后,285(136)的蒸汽灭菌周期。 洗涤去污机(washer-decontaminator)是利用水和清洗剂的协同作用清洗污物。 这些设备有时有加热的方法(93- 10min)。 研究表明:内镜的手洗和机洗大约可除去污染菌4 log。,手工清洗應注意事項: 自我防护;所有器械
6、应认為有病原体污染,操作时应穿戴全套防护服 水面下刷洗;防止溅泼和气溶胶 預洗, 多酶清洗时,水溫控制40以下,避免有机物凝固。 选用多酶中性清洗剂,无泡, 透明,易洗脱, 避免殘留。 (酸性清洗剂主要用於無機物污染,如尿液結晶,銹,水垢等) 清洗室刷子、肥皂盒、抹布保持乾燥,避免G-菌滋生。,自动清洗机清洗注意事項 清洗器械数量要适量 器械摆放方法:詳細阅读清洗机使用手冊 水溫設定:預洗、加酶清洗兩個阶段,水溫应40; 漂洗(水洗),則使用高温水清洗 清洗剂选用, 如手工清洗;,ATP广泛存在于各种生物体内 一个细菌体内含ATP约为10-18 molATP; 一个真菌体内约为10-1510-
7、16 molATP。 ATP检测仪的检测量为:10-15molATP, 菌数超过103cfu 才可能检出 ATP检测结果以相对吸光值(relative light unit, RLU)来表示,借此反推微生物或有机物残留在物品表面的程度。,ATP不仅是微生物污染指标,而且是有机物污染的指标 ATP可检测出来不一定是活菌污染。 ATP萤光检测不能替代微生物培养,但它适于检测内镜清洗检测。与微生物培养法相比,ATP萤光检测可立即得出结果。 目前,对微生物培养法作为检验清洗质量的常规检验是有争议的,内镜清洗与消毒灭菌 内镜是现代医学中最常用的诊疗技术之一,由于它是一种侵入性操作,可能导致组织损伤,由于
8、清洗消毒灭菌不彻底,可能引起医源性感染。,美国每年做结肠镜、乙状结肠镜和支气管镜的病人大约有1500万例次,由于消毒不彻底,导致交叉感染的大约为2.7% (其说不一) 常见的感染有乙肝、丙肝、结核、沙门氏菌、假单胞菌及常见菌,也有HIV, CJD。 (P.O.Box314 Albertson,New York 11507-0314 917-364-9485)。,导致内镜消毒不彻底的技术因素:1.消毒前内镜清洗不彻底主要原因: 内镜结构复杂,关节多、孔道细长 (2-6英尺,直径几毫米), 使用时, 易沾挂血液、黏液、组织、排泄物等 胃镜在应用后,可有105-1010cfu/mL的生物负载。 支气
9、管镜在清洗前, 平均负载为6.4104cfu/mL。,2. 消毒方法选择不当 消毒剂选择错误 消毒剂浓度, 不附合要求, 消毒作用时间, 不足以达到消毒要求。,导致内镜消毒不彻底的人为因素: 1. 内镜数量与病人数相差悬殊,严重影响清洗、消毒时间。 2. 设备不充实 (不同内镜同室检查,清洗消毒设备落后,三 桶、二桶法 )。 3. 专业人员消毒灭菌概念模糊,操作不规范,消毒剂使用和监 测技术不熟练。 4. 缺少严格管理制度。,1992年,Spach发现: 胃镜引起感染的281例中,主要是沙门氏菌和绿脓杆菌; 支气管镜引起感染的 96例中,主要为结核分枝杆菌和绿脓。 感染主要原因是: 清洗不彻底
10、,消毒剂选择和消毒方法不当。经研究发现: 在消毒后,病人使用前,其中, 71条胃镜内管道中, 细菌培养 23.9%有菌生长,个别内镜菌数105。,Bacterial Bioburden Associated with Endoscopes,Viral Bioburden from Endoscopes Used with AIDS Patients Hanson et al. Lancet 1989;2:86; Hanson et al. Thorax 1991;46:410,正确的清洗消毒方法: 内镜的清洗消毒, 首先要由专人负责, 参考APIC提出有六个步骤: 1.用过的内镜应立即进行清洗
11、,用自来水和清洗剂,或 含酶清洗剂, 清洗内镜外表面和各孔道内腔; 2.用水充分冲淋各内腔管道 3.浸于高水平消毒剂中,将消毒剂灌满吸引管道和活检 钳通道及气、水通道,作用至规定时间。,4.灭菌水冲淋内镜身和各管道, 如果用自来水冲淋, 需再用酒精冲洗;5.各管道, 压缩空气吹干;6.处理好的内镜, 贮存于可防止再污染的柜内。,软式内镜清洗与消毒 用后立即用湿纱布擦去表面黏液与污物,并反复送气、送水10s以上,取下内镜,装好防水盖,置容器中送清洗消毒室。 一.水洗 放流水槽中,用纱布流水反复擦洗镜身和操作部 取下活检钳、吸引器和送水按扭,用毛刷刷洗; 安装全管道灌流器、管道插塞、防水帽、吸引器
12、, 并反复抽吸活检孔道;,全管道灌流器接50ml注射器吸清水, 注入送气、水管道; 用吸引器吸干活检孔道中的水,擦干镜身。 用清水冲洗吸引器、送水器按扭和活检入口阀,并擦干; 附件如活检钳、细胞刷、导丝、碎石器等,放清水中刷洗,擦干; 清洗用的纱布应是一次性使用,清洗刷应一用一消毒。,二.酶洗: 多酶配制和使用法见说明书 将内镜置于酶洗槽中,用注射器吸取酶液100ml注入送气送水管道,用吸引器将酶吸入活检孔道,并擦操作部 附件、按扭、阀门浸于多酶洗液中,在超声波清洗器中清洗5-10min。 多酶洗液每洗一条内镜应更换。,消毒方法 (7min),例数,清洗后不长菌 例数 %,清洗消毒后不长菌例数
13、 %,消毒后合格例数(%),三槽不加酶,155,91(58.71%),137(88. 39%),147(94.84%),三槽加酶,301,229(76. 8%),283 (94. 2%),298(99. 0%),内镜人工清洗+消毒结果(北京 4 所医院 ),加酶组与不加酶组清洗消毒效果P001,差异有统计学意义 张泰昌等,中华消化内镜杂志,2002,19:261-264,三清洗 酶洗后的内镜用水枪或注射器冲洗管道,同时冲洗内镜表面, 将残留的酶清洗干净; 用50ml注射器向各管道冲气,排出其中残留水,四.内镜高水平消毒: 采用2%碱性戊二醛浸泡消毒的时间为: 胃、肠、十二指肠镜 10min 支
14、气管镜浸泡 20min 分枝杆菌等特殊感染 45min 要求灭菌的内镜浸泡 10h 当日停用内镜浸泡 30min 采用其他消毒剂必须符合消毒管理办法的规定。,消化内镜高水平消毒的时间: ( 2%-3.4%碱性戊二醛) 美国 20min 欧洲、日本 中国 、香港为 10min,五.消毒后内镜 清洗-干燥-保存 从消毒槽中取出后更换手套,用注射器向各管腔注入空气,去除消毒液 流动水下用纱布清洗外表,反复抽吸冲洗管道 纱布擦干内镜表面,压缩空气吹干各孔道(或用75%乙醇) 。 灭菌内镜必须用灭菌水冲洗。,内镜附件消毒: 活检钳、细胞刷、切开刀、导丝、碎石器、网篮、造影导管、异物钳等必须一用一灭菌,首
15、选压力蒸汽,也可用EO、戊二醛及批准适用于内镜消毒的消毒剂。 弯盘、敷料缸用压力蒸汽灭菌, 口圈高水平消毒:500mg/L含氯消毒剂 注水瓶及连接管用无腐蚀性的高水平消毒剂,注水瓶内用无菌水,每天更换。 每天诊疗工作结束必须对吸引瓶、吸引管、清洗槽、酶洗槽冲洗槽进行清洗消毒。,内镜其他消毒方法,美国常用于内镜消毒灭菌: 1,戊二醛(2%-3.4%碱性溶液) 2,自动清洗机过氧乙酸液体化学灭菌。 美国消化内镜协会推荐戊二醛溶液不含表面活 性剂,因为清洗时难以将它除去。 在许多医院里,OPA已经取代了戊二醛。 (引自APIC, Guidelines for Infection Control Pr
16、actice 2004 ),消毒剂使用中的误区 1.消毒剂中不会有菌生长 (杂菌污染-G-12) 2. 对反复使用的消毒剂不定时监测浓度 (gluta.) 3. 使用期间补充新液,(基层多见) 4. 使用中容器不加盖 (丧失和污染-gluta. Chlo.) 5. 配制容器质材不选择 (塑料-G-12,不消毒, 6. 水质不选择, (水中钙镁盐可影响消毒剂活性),7.反复浸泡消毒,不注意使用中浓度监测 检查前,才更换消毒液, 监测中,时有消毒液杂菌超标8.低效消毒剂作为灭菌器械保存液 新洁而灭作为手术器械保存液, 导至病人感染绿脓菌血症9.长期使用某种消毒剂, 长期使用低效消毒剂,如外科洗手用
17、碘伏、洗必泰或新洁尔灭导致产生抗性菌株。有报道: MRSA对碘伏的MIC增髙,因此,使用消毒剂也应及时更替,避免抗性菌株产生。,醋酸氯已定对MRSA和MSSA的MIC,PVP-I对MRSA和MSSA的MIC,合理使用消毒方法要点1.凡是耐热耐湿医疗器械首选压力蒸汽灭菌;2.有人活动的空间,空气消毒应采用通风或物理消毒法,不采用化学消毒法;3.不同用途医疗器械, 或用品,应按其危险性程度采用不同作用水平消毒剂, 或消毒器械进行消毒;4.低水平消毒可达到消毒要求的,不采用高水平消毒5.低浓度消毒液可达到消毒要求的,不采用高浓度消毒液6.在没有严格时间要求的情况下,采用低浓度-长时间,而不采用高浓度
18、-短时间,减少污染环境7.低危物品不必消毒,只需湿式擦拭,保持清洁,只有明确受病原体污染时, 才消毒;8.使用中消毒剂应定期监测浓度,及时更换,不可长期使用一种消毒剂,尤其亚致死剂量使用,防止抗性菌株形成。,受朊毒体污染医疗器械应经特殊处理 不含核酸的致病性糖蛋白,疯牛病、羊瘙痒症、CJD、Kuru病,具有传染性和遗传性。 CJD主要通过医源性传播,与生长激素和促性腺激素治疗、器管移植有关。病理表现:脑组织海綿状改变,散发性病例多见(占85%),潜伏期长,临床表现:进展性痴呆。 朊毒体对理化因子的抗力明显高于细菌芽胞. 消毒方法,尚待深入研究。 对此类病人应加强隔离和个人防护,避免不必要创伤性诊疗, 医疗用品应严格消毒,并废弃。,诸多学者研究表明: 121, 60 min 仅部份破坏其传染性; 132, 60 min 可使其失去传染性; 有些作者推荐136, 作用18min; 或1N NaOH 浸泡后, 再用压力蒸汽121 可灭活. 但也有些人认为: 这些方法可损害某些医疗器材。,谢谢,