肺炎链球菌候选蛋白疫苗clpp的保守性的论文.doc

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1、肺炎链球菌候选蛋白疫苗ClpP的保守性的论文肺炎链球菌候选蛋白疫苗ClpP的保守性的论文 【摘要】 目的: 评价酪蛋白裂解酶p6.0 l,dntp2.4 l,p13 l,p23 l,spn dna 1.5 l,la taq 0.4 l. 在pcr仪上按下列条件进行扩增:95预热5 min后反应30个周期:94 1 min,53 1 min,72 1 min. 末轮后72延伸 5 min. 取5 l反应产物置10 g/l琼脂糖凝胶电泳鉴定后,dna胶回收试剂盒回收pcr产物. 1.2.2ta克隆载体的构建与鉴定将回收纯化的12个pcr产物克隆至pmd18t载体,转入dh5感受态细胞,在amp+l

2、b平板上培养得到多个阳性克隆,单个阳性克隆细菌经增菌后进行质粒抽提后双酶切鉴定,并将质粒送往重庆医科大学感染实验室做双向测序. 1.2.3序列比对与氨基酸序列预测利用dnassist软件,将12个重组克隆质粒双向测序的结果及预测的氨基酸序列与genbank数据库对已公布的tigr4 spn全基因组序列进行相似性分析. 1.2.4抗原表位预测用抗原表位预测工具antigenic predicted antigenic peptides( a href=http:/bio.dfci.harvard.edu/tools/)分析不同血清型spn target=_blank clpp蛋白的抗原表位及其氨

3、基酸组成. http:/bio.dfci.harvard.edu/tools/)分析不同血清型spn clpp蛋白的抗原表位及其氨基酸组成. 1.2.5petclpp重组载体的诱导表达及纯化原核表达系统pet32a/clppe.coli bl21在终浓度1 mmol/l iptg,37,250 r/min条件下诱导目的重组蛋白clpp的表达. 收集的菌体超声波碎菌后,采用ninta柱纯化目的蛋白,以sdspage和biorad凝胶图像分析系统检查目的重组蛋白表达与提纯效果. 将透析除盐的纯化蛋白溶液经bradford法定量后备用. 1.2.6anticlpp抗血清的制备稀释后重组clpp蛋白溶

4、液与等体积的cfa或ifa充分混匀成乳状,在小鼠腹腔下接种制备好的抗原蛋白. 初次免疫时小鼠接受含200 l的cfa与重组蛋白混合物;小鼠再次与末次免疫时接受200 l的ifa与重组蛋白混合物. 小鼠经3次免疫后,分离小鼠血清,并用elisa法测其anticlpp抗体效价. 1.2.7estern blot检测将12株spn在c+y培养基中增菌至对数生长中后期(a620 nm 0.50.6左右),各取2 ml菌液离心取沉淀. 沉淀用pbs洗3次,用1上样buffer处理后,于100水浴5 min. 全菌裂解物经sdspage电泳分离后转膜. 以anticlpp多克隆抗体为一抗(1400),羊抗

5、鼠hrpigg为二抗(15000),dab为显色底物,estern blot检测菌体中clpp蛋白的表达,以金黄色葡萄球菌作为对照. 2结果 2.1目的基因pcr产物12株细菌的pcr产物经琼脂糖凝胶电泳后,可见清晰的扩增条带,产量高,所有pcr产物的分子大小一致,都位于600 bp左右. 2.2ta克隆载体的构建与鉴定将12个重组克隆质粒双酶切后,经10 g/l的琼脂糖凝胶电泳,于期望位置上出现目的条带,证明clpp开放读码框架正确克隆入pmd18t载体,同时菌落pcr结果也证明基因克隆正确. 2.3测序结果与序列比对不同株的clpp基因编码区大小与tigr4菌株中clpp基因一样,均为59

6、1 bp,起始密码子为atg,终止密码子为taa,编码196个氨基酸,基因序列一致性超过99%. 由于遗传密码子的简并性,预测的氨基酸序列一致性则为99.5%以上. 经生物学信息软件分析结果显示,serotype 4,5,6b 三菌株clpp氨基酸序列与tigr4菌株clpp氨基酸序列仅存在着一个氨基酸的差异,serotype 1 spn与tigr4菌株clpp氨基酸序列仅存在着两个氨基酸的差异,其余血清型与tigr4菌株clpp氨基酸序列完全一致. 2.4抗原表位分析结果12株spn clpp蛋白的抗原表位数目相同(分别含7个抗原表位)并且氨基酸组成及分布完全一致. 2.5融合蛋白及其ant

7、iclpp抗体效价转化菌经iptg诱导后,较未诱导菌有一条明显增粗的蛋白条带,mr约为42103左右,与期望值相符合(clpp蛋白约为mr 21103,再加上mr 21103左右的硫氧还蛋白). 蛋白溶液经镍离子柱亲和层析后透析,sdspage证明纯化产物为单一蛋白,纯度达90%. 该蛋白免疫小鼠后用elisa法测得的血清效价为168 000(图3). 2.6clpp蛋白的表达spn全菌裂解物经电泳分离后,与制备的anticlpp血清反应,12型spn全菌裂解物mr均在21103的位置出现特异性反应条带,而阴性对照未见反应条带出现. 提示不同血清型spn中均有clpp蛋白抗原的表达. 3讨论

8、蛋白疫苗是spn的第三代疫苗. 目前认为理想的spn蛋白质疫苗的标准应包括:能在细胞壁表达或者以分泌方式表达、在人体内抗原性高、能诱导杀菌的抗体和具有高度的保守性. 随着基因组学与蛋白组学的发展,spn毒力相关蛋白候选疫苗不断地被筛选出来. 但是一些蛋白由于等位基因的变异5-7,针对于该蛋白的抗体升高不能识别其等位基因变异的表达产物,从而不能诱导针对不同血清型菌株广泛的免疫保护. 因此,候选疫苗是否具有诱导高水平、能与不同种类的型或亚型菌株起交*反应的抗体的能力,是很多致力于spn疫苗的专家不断寻找高保守蛋白疫苗的原因8-9. 我们要评价clpp候选蛋白疫苗的价值就应考虑其在不同血清型spn的

9、保守性,并考虑clpp是否在spn菌体中表达. 本研究选用分离自不同标本并且在中国比较常见的1012株不同血清型spn进行研究,结果发现,在12株菌中clpp基因相当保守,其抗原表位氨基酸组成以及分布完全一致,无抗原位点的突变,而且12株spn菌体蛋白中都有clpp蛋白的表达. 我们的结果初步表明:clpp在不同血清型spn中高度保守,在不同型菌体中都有表达. 细胞壁表达的高保守性蛋白是首选的疫苗靶点. 目前研究较多的几个spn蛋白质疫苗如pspa11,pspc6和ply12等,pspa和pspc虽在细胞壁表达,但由于等位基因变异,保守性相对较差;ply虽具有较高的保守性,但在细胞内表达,其抗

10、体难以透过细胞壁与之结合,疫苗保护效果难以得到保证. 而clpp在spn热休克后从细胞内向细胞壁易位3,同时具有高度的保守性,因此它是spn很好的疫苗靶点,将其单独使用或与其他的蛋白疫苗组合使用,可能会使spn蛋白疫苗的研究取得突破性进展,从而为我们自主开发广保护范围的spn疫苗提供理论基础. 另外我们也采用了blast方法分析了spn clpp与邻近种属细菌clpp基因序列的相似性,发现spn clpp与许多其它种属细菌的clpp基因序列具有高度的同源性,比如spn的clpp与唾液酸链球菌clpp的预测氨基酸序列相似程度为87%88%,与无乳链球菌clpp的预测氨基酸序列相似程度为91%92

11、%. clpp可能在这些菌属中存在相同的抗原表位,并可能诱发交*反应,这应该引起注意. 总之,在大规模人类免疫接种前对这类高保守蛋白进行彻底的安全性调查,将是非常必要的.【参考文献】 1 bogaert d, hermans p, adrian pv, et al. pneumococcal vaccines: an update on current strategiesj. vaccine, 2004,22:2209-2220.2 yu ay, houry a. clpp: a distinctive family of cylindrical energydependent serine

12、 proteasesj. febs lett, 2016,581:3749-3757.3 kon hy, ogunniyi ad, choi mh, et al. the clpp protease of streptococcus pneumoniae modulates virulence gene expression and protects against fatal pneumococcal challengej. infect immun, 2004,72:5646-5653.4 butler sm, festa ra, pearce mj, et al. selfpartmen

13、talized bacterial proteases and pathogenesisj. mol microbiol, 2006,60:553-562.5 moscoso m, obregon v, lopez r, et al. allelic variation of polymorphic locus lytb, encoding a cholinebinding protein, from streptococci of the mitis groupj. appl environ microbiol, 2005,71:8706-8713.6 iannelli f, oggioni

14、 mr, pozzi g. allelic variation in the highly polymorphic locus pspc of streptococcus pneumoniaej. gene, 2002,284:63-71.7 hollingshead sk, becker r, briles de. diversity of pspa: mosaic genes and evidence for past rebination in streptococcus pneumoniaej. infect immun, 2000,68:5889-5900.8 barocchi ma

15、, censini s, rappuoli r. vaccines in the era of genomics: the pneumococcal challengej. vaccine, 2016,25:2963-2973.9 giefing c, meinke al, hanner m, et al. discovery of a novel class of highly conserved vaccine antigens using genomic scale antigenic fingerprinting of pneumococcus ith human antibodies

16、j. j exp med, 2016,205:117-131.10 liu y, ang h, chen m, et al. serotype distribution and antimicrobial resistance patterns of streptococcus pneumoniae isolated from children in china younger than 5 yearsj. diagn microbiol infect dis, 2016,61:256-263.11 胥文春,曹炬,许颂霄,等. pspa免疫小鼠抗肺炎链球菌侵袭性感染研究j. 第四军医大学学报, 2016,28:783-786.12 alexander je, lock ra, peeters cc, et al. immunization of mice ith pneumolysin toxoid confers a significant degree of protection against at least nine serotypes of streptococcus pneumoniaej. infect immun, 1994,62:5683-5688.

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