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1、实 验 七家兔呼吸运动调节与实验性急性呼吸衰竭,【实验目的】1、学习气管插管方法；2、学习记录呼吸运动曲线的实验方法；3、观察神经因素、体液因素等对呼吸运动的影响；4、学习复制急性肺水肿呼吸衰竭动物模型；5、观察家兔急性呼吸衰竭时的呼吸运动变化并分析其病理 生理学机制。,2023/7/30,3,延髓 基本呼吸中枢 吸气神经元 吸气切断神经元,脑桥 呼吸调整中枢,脊髓 呼吸肌运动神经元,吸气肌,呼气肌,+,+,+,+,+,+,-,-,迷走神经,呼吸节律的形成及反射性调节,2023/7/30,4,中枢化学感受器,外周化学感受器,延髓呼吸中枢,窦神经、迷走神经,+,+,+,+,CO2,CO2,O2,
2、+,+,呼吸加快、加强,H+,H+,呼吸肌本体感受器,脊髓运动神经元,+,气道加长,肺牵张感受器,迷走神经,呼吸肌本体感受性反射,肺牵张反射,【实验步骤】,一、动物准备：1、抓取（正确抓取方法）2、称重 3、麻醉（25%乌拉坦 4ml/kg）4、固定5、备皮：颈部、剑突下6、气管插管 7、分离颈外浅静脉（呼吸衰竭插管用）8、剑突下呼吸明显处丝线固定、连接张力换能器,二、连接装置：1、张力换能器挂到剑突下的腹部皮肤上-选择“输入信号”1通道“张力”呼吸运动2、进入生物信号采集系统-实验项目-呼吸运动的调节3、记录并保存实验曲线；4、调节实验参数、并固定；5、实验过程做好标记；6、实验前要有正常呼
3、吸曲线做对比。,三、观察项目（一）家兔呼吸运动的调节1、正常呼吸曲线（呼吸频率和幅度）,听诊呼吸音；2、CO2对呼吸运动的影响；3、缺氧对呼吸运动的影响；4、增大无效腔对呼吸运动的影响；5、气管狭窄对呼吸运动的影响（橡皮管夹闭2/3-3/4）；6、窒息对呼吸运动的影响；7、乳酸对呼吸运动的影响：耳缘静脉注射2ml乳酸8、尼可刹米对呼吸运动的影响：耳缘静脉注射1ml尼可刹米。,（二）、急性实验性肺水肿模型的复制(P97)分组：实验组，对照组实验组：颈外浅静脉插管，连接静脉输液管，生理盐水量（100ml/kg），速度:以180-200滴/min在即将输完时向输液管内加入0.l肾上腺素（1ml/kg
4、）输入静脉。继续输液生理盐水，10-15滴/分钟输入。以便必要时重复给药。对照组:不给肾上腺素,其他同上.,密切观察：是否出现呼吸困难、急促，呼吸曲线有否变化。气管内是否有粉红色泡沫样液体溢出。肺部是否出现湿性罗音（听诊器）。-当动物出现明显的呼吸急促、气管内有泡沫样液体溢出、两肺出现湿性罗音等肺水肿体症时，-处死动物-取肺-称重、求肺系数对照组也处死-取肺-称重、求肺系数.,开胸取肺,动物打开胸腔;用线在气管分叉处结扎以防止肺水肿液渗出;在结扎处以上切断气管;小心将心脏及其血管分离（勿伤及肺），把肺取出，用滤纸吸去肺表面的水份后称重计算系数肺系数计算：肺系数=肺重量（g）/体重（kg）正常肺
5、系数为45。,呼吸曲线描记,图1 家兔呼吸运动的实验曲线,实验结果标记、打印、讨论分析，书写实验报告,【实验结果及结果分析】,【注意事项】1、麻醉要适量，注意观察动物呼吸2、气管插管前注意把气管内清理干净后再插管。3、作完每一项目后，必须等待动物呼吸完全恢复正常 及平稳后再进行下一项实验。有正常呼吸曲线对照 4、静脉注射乳酸时，要严格掌握剂量，并避免乳酸溢 出血管刺激皮肤引起动物的挣扎。,【注意事项】,5.注入尼克刹米速度要慢,如果注入过快,会造成家兔过度兴奋以至发生惊厥。6、在取肺前先用粗棉线在气管插管下方结扎气管，以防止洗肺液流出。7、术中注意及时止血，若出现渗血，可用湿温生理盐水纱布压迫止血。少量出血时，可用止血钳夹闭出血点。大血管出血时，应立即结扎出血管。8、实验过程中保持装置及参数不变,家兔固定和剪毛,图 气管插管术示意图,图 气管插管术示意图-示气管切口,图 气管插管术示意图-示固定插管,
