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1、2023实体肿瘤外周血细胞免疫功能实验室检测专家共识（完整版）摘要外周血细胞免疫功能检测在实体肿瘤免疫治疗受益者筛选、免疫相关不良反应监测、肿瘤疗效及预后评估等方面受到临床关注。为促进临床有效选择和解读实体肿瘤诊疗相关的外周血细胞免疫功能指标,中国医师协会检验医师分会、北京医师协会医学检验专科医师（技师）分会、国家癌症中心、国家肿瘤区域医疗中心、国家医学检验临床医学研究中心（中国医科大学附属第一医院）组织相关领域的学术专家，对外周血细胞免疫功能指标包括T淋巴细胞亚群精细分型、髓源性抑制细胞和细胞因子的临床应用价值进行了充分总结，并撰写了专家共识，同时对外周细胞免疫功能实验室检测指标和方案或方法
2、给出了推荐和参考方向,以期为实体肿瘤患者的精准诊疗提供帮助。T细胞介导的细胞免疫应答是宿主抗肿瘤免疫最主要的途径，也是肿瘤发生免疫逃逸形成免疫抑制的关键靶点。肿瘤微环境的局部细胞免疫，以及基于脾脏、淋巴结和血循环的外周细胞免疫的功能状态与肿瘤发生发展和治疗转归密切相关【W。基于外周血的细胞免疫功能检测在筛选免疫治疗受益者、监测免疫相关不良反应（immune-relatedadverseeventsJrAE）及评估肿瘤疗效和预后方面的作用越来越受到临床关注。如何正确选择和解读实体肿瘤诊疗相关的外周血细胞免疫功能指标,目前国内外尚无统一规范。为此，中国医师协会检验医师分会、北京医师协会医学检验专科
3、医师（技师）分会、国家癌症中心、国家肿瘤区域医疗中心、国家医学检验临床医学研究中心组织在肿瘤免疫监测和流式细胞术分析淋巴细胞亚群领域经验丰富的专家，结合国内外进展，撰写实体肿瘤外周血细胞免疫功能实验室检测的专家共识,旨在帮助临床合理选择免疫指标评估外周血细胞免疫功能，以辅助实体肿瘤的精准诊疗。鉴于细胞免疫功能在实体肿瘤免疫治疗中的重要价值共识编写工作组关注细胞免疫应答从启动到发挥效应功能的全过程,针对参与细胞免疫应答的效应细胞、辅助细胞、负向免疫调节细胞等多种细胞亚群和免疫分子进行了临床研究证据的整合，筛选出在肿瘤免疫治疗监测、预后评估中具有指导价值的外周血细胞免疫功能实验室指标,并结合临床检
4、验实践归纳为T淋巴细胞亚群精细分型，髓源性抑制细胞（myeloid-derivedsuppressorcellzMDSC）亚群分析和细胞因子水平检测三大类，并对这些指标的检测方案和临床应用选择作出了推荐。共识形成方法共识发起机构：本共识由中国医师协会检验医师分会、北京医师协会医学检验专科医师（技师）分会、国家癌症中心、国家肿瘤区域医疗中心、国家医学检验临床医学研究中心共同发起。共识工作组:成立多学科工作组,包括以检验科为主,血液科、肿瘤内科、放疗科等的多学科专家共61位，来自全国31个省、自治区、直辖市的54家医疗机构，包括执笔人、证据收集人和专家组成员。共识目标人群：实体肿瘤患者。共识使用者
5、：检验医师/检验技师；肿瘤相关专业医师。共识制订目的：指导临床合理选择免疫指标评估外周血细胞免疫功能，以辅助实体肿瘤的精准诊疗包括筛选免疫治疗受益者、监测免疫不良反应、评估疗效和预后等。问题的收集和遴选：共识工作组组长及执笔人围绕实体肿瘤外周血细胞免疫功能实验室检测进行文献调研，并在专家组成员中广泛咨询征集共识的主要内容和核心问题，经研究梳理后确定了5个方面（共识制订的目的、共识使用者、检测标志物、检测方案或方法、临床应用）共10个核心问题。文献的检索和筛选：共识工作组组长、执笔人及证据收集人聚焦参与细胞免疫应答的效应细胞、辅助细胞、负向免疫调节细胞等多种细胞亚群和免疫分子在实体肿瘤免疫治疗受
6、益者筛选、免疫不良反应监测、疗效和预后评估等方面的临床意义,通过检索Pubmed梳理国内外临床研究证据。共识的提出和形成：在充分评价所得国内外证据的基础上，共识工作组组长及执笔人通过共识会议完成了专家共识讨论稿。通过函审形式由全体专家组成员对讨论稿的内容提出修改意见和建议,再由执笔人修改形成了专家共识修改稿，并提出了10条专家共识。共识编写工作组组长编制了实体肿瘤外周血细胞免疫功能实验室检测专家共识修改稿的专家评审意见表，通过函审形式由全体专家组成员进行评审。本共识对证据等级与推荐等级的定义和具体表述见表1、2o参考德尔菲法就推荐意见达成共识。根据评审结果，由执笔人修改形成专家共识审核稿、通过
7、函审形式提交给全体专家组成员做最后审核。共识工作组组长及执笔人根据反馈意见和建议完成修改、补充后形成实体肿瘤外周血细胞免疫功能实验室检测专家共识，通过共识会议定稿，包含10条专家共识共17项实验室检测指标的临床应用选择建议。共识已在国际实践指南注册与透明化平台完成注册和计划书提交，注册号为PREPARE-2023CN306o表1本专家共识的证Ig分皴g-.Ng切E耒目军线屿逑班率分折：序3高的修矶灯mmCE忒蛉或皿性次.性研究M敢/*自BateaSKta修隹防性阴究：质量tWWa试蛉或类scwmw隹研究Ce*.目质R较4出划机时中丽成餐电M-GM回三住就应：质一iOB三3!B世队列於2;fWf
8、l三W5S:秀例雄田专家共识表2本专家共识的推荐分级W务-m11WMMMBWWIWL00;MMII*8MJ1IN且EnEte90此条共国有心SMB讯目80%A专率EBNm:此条NmByKM值挎目90%3RtkN30%:此条共IRlIBKH3目与JrEBZ90%93此条共识有8物HE目80%专5CT率ZTO”:此条其对GRlaEl且90%CT三80%不作瘦存比祭共识穹人BtfiaB支持但专家准K70%:比条共浜!C班&矜但专宗淮尊奉80T淋巴细胞亚群精细分型T淋巴细胞亚群精细分型是指对T细胞功能亚群、分化亚群以及功能表型（如活化表型、增殖表型、衰老表型和耗竭表型等）进行评估。利用流式细胞术检测代
9、表不同亚群和功能表型的特定分子标志物,对其进行定量检测。一、检测指标(一)功能亚群1.细胞毒性T细胞(cytotoxicTcell,Tc细胞)：TC细胞又名CD8+T细胞，是杀伤肿瘤细胞最主要的效应细胞，以CD3+CD8+为分子标记。2.辅助性T细胞(helperTcell,Th细胞)：Th细胞又名CD4+T细胞，辅助CD8+T细胞的活化、增殖和效应功能以CD3+CD4+为分子标记；CD4+T细胞活化后分化为不同的效应亚群，Th各亚群之间的平衡有助于抗肿瘤免疫应答强度和免疫稳态的维持，其中Thl亚群产生的细胞因子IL-2对CD8T细胞的活化、增殖和效应功能至关重要。3.1型NKT细胞(inva
10、riantnaturalkillerTcellriNKT细胞):iNKT细胞通过激活CD8T细胞、促进CD8T和CD4T细胞的免疫记忆、调节免疫抑制细胞如MDSC的功能等促进细胞免疫应答,以CD3+CD16+CD56+V24+V11+或CD3+CD16+CD56+Va24+Ja18+为分子标记。4.调节性T细胞(regulatoryTcellzTreg细胞):Treg细胞是CD4+T细胞的免疫负向调节亚群通过接触，硼制和分泌免疫抑制因子等途径抑制CD4+T和CD8T细胞的活化、增殖和效应功能，从而抑制细胞免疫应答，以CD3+CD4+CD25+CD127low或CD3+CD4+CD25+FoxP
11、3+为分子标记。(二)分化亚群1初始T细胞(naiveTceIIzTN细胞)：TN细胞是未受到抗原刺激的静息细胞，介导初始免疫应答的启动，TN细胞的比例是反映细胞免疫动员储备能力的指标，以CD45RA+CCR7+CD95-或CD45RO-CD62L+CD95-为分子标记。2 .记忆T细胞(memoryTcell,TM细胞)：TM细胞介导记忆免疫应答,随着分化进程进一步分为C)T记忆干细胞(TmemorystemcellrTSCM细胞)以CD45RA+CCR7+CD95+或CD45RO-CD62L+CD95为分子标记；(2)中央记忆T细胞(centralmemoryTcell,TCM细胞)，以C
12、D45RA-CCR7+或CD45RO+CD62L+为分子全血己；(3)效应记忆T细胞effectormemoryTcellJEMW)CD45RA-CCR7-或CD45RO+CD62L-为分子标记；(4)终末分化效应记忆T细胞(terminallydifferentiatedeffectormemoryTcell,TEMRA细胞),又称终末分化效应T细胞(terminallydifferentiatedeffectorTcell,TTE细胞)以CD45RA+CCR7-或CD45RO-CD62L-为分子标i己。TSCM细胞、TCM细胞和早期TEM细胞主要介导记忆免疫应答；晚期TEM细胞和终末分化的
13、TEMRA细胞主要发挥效应功能，但其增殖能力差，存活时间短。TM细胞亚群的比例是反映细胞免疫记忆储备能力的指标。(三)功能表型1.活化表型：推荐检测HLA-DRCD38,HLA-DR在T细胞活化晚期稳定性表达；CD38在TN细胞中是组成性表达的，在静息记忆细胞中表达下调，在活化T细胞中表达升高。2增殖表型：推荐检测Ki-67,Ki-67为一种核蛋白，在细胞分裂中发挥重要调控作用，在Gl-M期表达水平升高，但在GO期不表达或低表达。3 .衰老表型：推荐检测CD28CD27CD57,CD28是T细胞活化必须的协同刺激分子,CD27是T细胞的一种共刺激分子,CD57是T细胞分化至终末期的标记。在T细
14、胞分化中，分化早期阶段TN、TSCM和TCM细胞一般表达CD28和CD27f存活时间长；终末分化阶段TEMRA细胞丢失CD28、CD27并伴随CD57的表达，提示免疫衰老,存活时间短；中晚期分化阶段的TEM细胞具有异质性，其中CD28+CD27-TEM细胞生存时间长,主要发挥记忆作用；而CD28-CD27+/-TEM细胞衰老程度高，生存时间短，偏效应作用。TN细胞若缺乏CD28,将不能启动初始免疫应答，提示T细胞无能;TM细胞分化过程中，CD28表达下调,提示T细胞衰老。CD28+T细胞的比例是反映细胞免疫储备能力的指标；CD28-T细胞的比例是反映T细胞无能和衰老的指标，结合CD27和CD5
15、7用以鉴别衰老T细胞，CD28和CD27表达下调、CD57表达上调提示T细胞衰老。4 .耗竭表型：以高表达抑制性受体且增殖能力、生存能力和效应功能下降为特征，推荐检测的抑制性受体以程序性死亡分子1(programmeddeath-1,PD-1)为主,辅以细胞毒性T淋巴细胞相关抗原4/淋巴细胞激活基因-3/T细胞免疫球蛋白黏蛋白3,同时结合活化表型和增殖表型综合评估。二、检测方案推荐T淋巴细胞亚群精细分型涉及的分子标志物数量较多，推荐同时标记多种抗体进行淋巴细胞亚群精细分型分析。结合临床常规开展的TBNK淋巴细胞亚群检测,本共识推荐T淋巴细胞亚群精细分型检测方案(表3和图2)。S3流超ffll术
16、检测T淋巴细胞亚群吸分型标志物姐合方事力事135CD33CD2S8127IOM合2CO45C03OMCMOMSftA%PO-I1CD38HL6VJCD57CD3OMcmOMSRACCR7CDa)27PD1047ftViOMSCD3OMa2$81278W2CMCDOMSRAcPO-I11047B”anCD3OMCXMSRACaPaHLA-CftCD384CD3CMOMSAA(XR7CD57CDeaSa)2s法：aa)DEaGDlMiJWSHm用玳人2G4FObWaKMPo4汨a3.H体耳WWTb*3:bWOrHMWeWMW夕敢0381 .根据标本处理方法不同，每管各司其职：鉴于绝对计数管需要免洗
17、法,而精细亚群检测需要溶血洗涤,建议绝对计数管与多参数精细亚群管分开进行2。2 .绝对计数法：绝对计数方法可使用单平台或者双平台技术，建议首选单平台技术。单平台方法可以使用体积法或者微球法进行绝对计数。共识推荐使用临床常规开展的TBNK淋巴细胞亚群检测管作为绝对计数管，按照2011年卫生部指南推荐3进行操作，可以使用1管6色方案(CD45CD3CD4CD8CD19CD16+CD56)或者2管4色方案(CD45CD3CD4CD8,CD45CD3CD19CD16+CD56);精细亚群管所需计数通过比例换算获得2。3 .精细亚群检测：管13和管14分别使用10色和8色方法进行淋巴细胞亚群的精细分型，
18、推荐首选10色组合，也可根据实验室自身条件选择8色组合，6色组合可开展部分精细亚群的检测，6色以下组合不宜进行精细亚群检测。4 .荧光素组合：鉴于不同仪器的荧光通道存在差异性,实验室宜根据自身检测系统的配置，合理选择和搭配荧光抗体、进行正确的补偿设置、抗体滴定设置和对照设置，进行方案优化。5 .对于临床标本的动态监测，要求不同时间点使用的方案一致，尤其是涉及绝对计数，否则需要做严格的方法学比对。6 .PD-1动态监测：PD-1免疫检查点抑制剂治疗后，与细胞表面PD-1结合，会干扰抗PD-1荧光抗体的染色。为解决这一问题，推荐使用抗人IgG-FC荧光抗体与抗PD-1荧光抗体共同检测的方案进行PD
19、-1动态监测，其中抗人IgG-Fc荧光抗体与PD-1免疫检查点抑制剂结合,抗PD-1荧光抗体与未被占据的PD-1位点结合，从而获得细胞表面PD-1的表达水平。抗人IgG-Fc荧光抗体针对的IgG亚型应与患者所用的PD-1免疫检查点抑制剂一致，如常用的PD-1免疫检查点抑制剂帕博利珠单抗(Pembrolizumab)和纳武尤单抗(Nivolumab)均为IgG4型另U,动态监测相应免疫治疗患者T细胞PD-1的表达则应同时使用抗人G4-Fc荧光抗体和抗PD-1荧光抗体，2种抗体可选用同一荧光标记。三、临床应用选择(一)辅助评价细胞免疫功能状态实体肿瘤患者的细胞免疫功能往往下降,在多种实体肿瘤中,以
20、外周血CD3+T、CD4TxCD8+T细胞绝对数的下降为特征,而比例的变化不明显4,5,6,7,8,90此外，在头颈鳞癌、乳腺癌、食管癌等多种实体肿瘤中，外周血iNKT细胞的数量与健康对照相比，也呈明显下降趋势8,10,11,但由于iNKT细胞在外周血中含量极低，不作为常规推荐。共识1建议监测实体肿瘤患者基线时外周血T细胞功能亚群CD3+T、CD4+T、CD8+T细胞的绝又檄，用于辅助评价细胞免疫功能状态(证据级别：B;推荐级别：强)。(二)评估预后外周血正向调节细胞免疫应答的T细胞功能亚群绝对数与患者预后呈正相关角疫负向调节亚群或衰老亚群比例的上升是预后不良的危险因素。在非小细胞肺癌(non
21、-smallcelllungcancerzNSCLC)和乳腺癌等实体肿瘤中，CD4+T、CD8+T细胞绝又蹶的降低均与不良预后相关基线时CD4+T细胞的绝对数是独立的预后保护因氯4,5z12o在头颈鳞癌中，基线时低水平的iNKT细胞数量与高死亡风险相关8,13o相反，在胃癌、NSCLCx鼻咽癌等实体肿瘤中，基线时免疫负向亚群Treg细胞或CD28-CD8T细胞比例的上升与患者生存呈负相关14J5J6J7J8共识2建议监测实体肿瘤患者基线时外周血T细胞功能亚群尤其是CD4+T、CD8+T细胞的绝对数（证据级别：B;推荐级别：强）以及免疫负向调节亚群Treg细胞和CD28-CD8+T细胞的比例（证
22、据级别：B;推荐级别：中），用于评估肿瘤患者的预后。（三）辅助免疫检查点抑制剂（immunecheckpointinhibitors,ICI）疗效监测1.外周血T细胞分化亚群的水平和功能状态检测：（1）基线水平：基线时，外周血TN细胞和TM细胞尤其是TSCMxTEM细胞的比例与持续临床获益和预后可呈正相关；相反，终末分化阶段的衰老T细胞的比例与预后可呈负相关。在黑色素瘤和NSCLC中证实，外周血早期分化阶段T细胞尤其是CD8TEM或CD4+TNxCD4+TSCM细胞比例高的患者，会有持续临床获益和良好预后19,20,21z22;而终末期分化阶段T细胞包括CD8+TEMRA和衰老CD8+T细胞（
23、CD28-CD57+）比例高的患者，预后可能不佳19,23。（2）治疗过程中的变化趋势：ICI治疗诱导T细胞的活化和增殖，以HLA-DRxCD38和Ki-67表达增高为特征24。T细胞活化增殖程度往往与疗效和预后呈正相关，而衰老T细胞的大量出现提示预后不良。在头颈鳞癌中，ICI治疗后外周血CD4+LCD8T细胞活化分子CD38的增加程度与临床获益可能呈正相关，其中，CD4TEMRAxCD8+TEMRA细胞亚群在疾病进展组与缓解组之间的活化程度差异最为明显25o在NSCLC中JCI治疗后外周血CD4TM细胞Ki-67的增加程度与临床获益和良好预后相关26;相反,治疗中CD28-CD4+T细胞的比
24、例大幅增高与免疫治疗超进展和预后不良相关27共识3对于ICI治疗的实体肿瘤患者，推荐动态监测外周血T细胞分化亚群的水平和功能状态，尤其是基线时CD4+T、CD8T细胞分化亚群的比例（证据级别：A;推荐级别：强）及衰老CD4+T、CD8+T细胞的比例（证据级别：B;推荐级别：中）、治疗过程中CD4+T、CD8+T细胞分化亚群的活化和增殖程度（HLA-DR+,CD38,Ki-67+）及衰老程度（CD28-CD57+）（证据级别：B;推荐级别：中），用于筛选ICI治疗受益者、评估IQ治疗的应答程度。2.PD-1表达检测：（1）基线水平:基线时,PD-1在CD8+T、CD4+T细胞分化亚群的表达和相对
25、比例与ICI治疗临床获益和预后可能相关。多项研究证实,NSCLC患者中，基线时外周血PD-1+CD8TxPD-1+CD4+T细胞的比例以及PD-1+CD8+T细胞PD-1+CD4+T细胞比值高的患者JCI治疗的效果更佳，预后更好28,29,30o进一步研究发现PD-1在不同的T细胞分化亚群表达丰度不同，主要表现为TM细胞（TCMxTEM）显著增高，并且外周血PD-1TM细胞的相对水平与临床获益和预后呈正相关。NSCLC队列研究发现，PD-1CD4+TM细胞水平、PD-1+CD27-CD28+CD8+TEM细胞/PD-1+CD8+TEMRA细胞比值及PD-1+CD8+T细胞PD-1+CD4+T细
26、胞比值是预测ICl疗效，判断预后的独立指标26,29,30,31。（2）治疗过程中的变化趋势：ICI治疗后PD-1CD8T细胞的功能状态变化与临床应答密切相关。在NSCLC、黑色素瘤等实体肿瘤中，ICI治疗后外周血PD-1+CD8+T细胞Ki-67的水平增高程度与持续临床获益和预后呈正相关32,33。并且，在NSCLC中，主要是CD27-CD28+PD-1+CD8+TEM细胞Ki-67水平增高程度与临床获益和预后呈正相关31共识4对于ICl治疗的实体肿瘤患者，推荐监测基线时PD-I在外周血T细胞分化亚群的表达和相对比例（证据级别：A;推荐级别：强），并动态监测外周血PD-1+T细胞分化亚群的功
27、能状态，尤其是治疗过程中PD-1+T细胞分化亚群的活化和增殖程度（CD38+,Ki-67+）（证据级别：B;推荐级别：中），用于筛选ICI治疗受益者、评估ICI治疗的应答程度。（四）辅助监测irAE发生动态监测T细胞分化亚群的水平和功能状态，有助于监测irAE的发生。不同研究均发现,黑色素瘤基线时或ICI治疗过程中，外周血TEM细胞尤其是CD4TEM细胞的比例与irAE发生具有一定相关性，且治疗中T细胞特别是CD4+T细胞出现显著活化（CD38+或HLA-DR+）的患者,出现irAE的可能性高20,34z35o此外，在黑色素瘤和NSCLC中，基线时外周血Treg细胞的比例与irAE的发生呈负相
28、关36。共识5对于ICI治疗的实体肿瘤患者,建议监测基线时外周血CD4+T、CD8+T细胞分化亚群TEM细胞（证据级别：B;推荐级别：中）和Treg细胞的比例（证据级别：C;推荐级别：弱），并动态监测治疗过程中外周血CD4+LCD8T细胞的活化程度（CD38+、HLA-DR+）（证据级别：B;推荐级别：中），用于监测irAE的发生。MDSC亚群分析一、检测指标和方案推荐MDSC是免疫负向调节细胞通过抑制CD4+T和CD8+T细胞的活化和功能、驱动和招募Treg细胞等多种机制，抑制宿主的抗肿瘤细胞免疫应答。MDSC亚群包括多形核髓源性抑制细胞（polymorphonuclearMDSCzPMN-
29、MDSC）、单核样髓源性抑制细胞（monocyticMDSCzM-MDSC）和早期阶段髓源性抑制细胞（early-stageMDSCze-MDSC）o根据不同亚群特有的表型特征，利用流式细胞术可以进行定性和定量检测。MDSC是来源于造血干细胞分化的未成熟的髓系细胞，是树突状细胞、巨噬细胞和/或粒细胞的前体，异质性高，在外周血中准确鉴定其表型具有一定难度。目前外周血MDSC的检测有两类，一类是分离外周血单个核细胞后检测37,该方案流程繁琐,并且容易丢失部分亚群，如PMN-MDSC,不推荐作为临床常规检测方案；另一类是直接全血检测38y更适合临床应用。MDSC检测结果受标本类型、分子标志、圈门流程
30、等影响，本共识基于以往文献报道38及临床实践推荐如下基于全血标本的检测方案（表44流式细电术鉴定全血题源性制铀奥交群表型和图4)。OM5*3CDWCD20C016tA DRCO33l 1b*aXS*CCD19CD2O-CD56a16KORCD33*a)Mb*a15*a14aWanBwawrCO56Bi6Mar c3*aj ib*a)saM*aMS*a3 CO19 a20 CD56 COl6M-ORCD33*COb*a15 a)14二、图4流式细胞术鉴定全血髓源性抑制细胞亚群的设门流程1 .通过前向角散射(forwardscatter.FSC而侧向角散射(sidescatter,SSC)组合设门
31、1,圈出总细胞群体，同时去除细胞碎片和死细胞。2 .门1内通过前向角散射面积(forwardscatter-area,FSC-A)和前向角散射高度(forwardscatter-height,FSC-H)组合圈出单个细胞群体(门2),去除粘连细胞。3 .2内利用CD45和SSC,圈选CD45+细胞群。4 .利用CD45和SSC,反向设门排除嗜碱性粒细胞。5 .利用淋巴细胞系标志物(CD3、CD19和/或CD20)和SSC圈选淋巴系标志物阴性细胞群。6 .利用CD16、CD56和SSC圈选CD16-CD56-细胞群，以排除中性粒细胞及NK细胞。7利用HLA-DR和FSC圈选HLA-DR-细胞群。
32、8.利用嗜酸性粒细胞的高自发荧光特性（荧光通道可选择V500-CPE-CF594PEPerCPPE-Cy5.5等）结合SSC圈选阴性群体，以排除嗜酸性粒细胞。9.利用CD33和CD11b圈选CD33+CD11b+细胞群为总MDSCo10利用CD14和CD15,圈选CD14-CD15+细胞群为PMN-MDSCzCD14+CD15-细胞群为M-MDSCfCD14-CD15-细胞群为e-MDSCo上述方案为首选推荐,CD56-细胞群也可以在第5步中和其他淋巴细胞一并排除，实验室可根据自身条件进行调整，在荧光通道有限的系统中如八色平台，CD45抗体的荧光检测通道可与检测嗜酸性粒细胞自发荧光的通道一致，
33、在步骤4利用CD45和SSCz反向设门同时排除嗜碱性粒细胞和嗜酸性粒细胞。六色平台实验室可以仅检测总MDSe水平。实验室宜根据自身检测系统的配置，合理选择和搭配荧光抗体、进行正确的补偿设置、抗体滴定设置和对照设置，优化方案。二、临床应用选择（一）基线水平辅助评价细胞免疫功能状态，评估预后在多种实体肿瘤中，外周血MDSC及其亚群的比例和绝对数显著升高38,39,40,41,42,43,监测外周血MDSC的基线水平可辅助评价细胞免疫功能状态，评估预后。不同来源的肿瘤，发生改变的MDSC亚群可能不同如结直肠癌患者外周血以PMN-MDSC亚群升高为主42,而肝细胞癌以M-MDSC亚群升高为主38。外周
34、血MDSC及其亚群的水平与多种实体肿瘤的分期、转移或复发呈正相关，可能是实体肿瘤发展的风险因素39,40,41;在NSCLC、结直肠癌等多种实体肿瘤中与患者的预后呈负相关42,43,44t450此外,外周血MDSC及其亚群的基线水平还可作为免疫治疗相关伴随诊断指标用于辅助筛选免疫治疗的潜在受益者。MDSc是肿瘤对IQ出现抵抗的重要原因，其不仅具有强大的抑制细胞免疫应答的能力，还可以直接促进肿瘤血管生成、诱导缺氧。在使用ICI治疗的黑色素瘤、NSCLC等多种实体肿瘤患者中，基线时外周血低水平的MDSC,尤其是M-MDSC亚群与ICI治疗的临床获益和良好预后相关46,47,48,49,50,51,
35、52,53o共识6推荐监测实体肿瘤患者外周血MDSC及其亚群的基线水平，用于辅助评价细胞免疫功能状态、评估预后、筛选免疫治疗受益者（证据级别：A;推荐级别：中）。（二）动态监测辅助判断疗效，评估预后监测肿瘤患者常规治疗前后MDSC及其亚群水平变化的趋势，可以辅助判断疗效，评估预后。在转移性结直肠癌和胃癌中，常规治疗后MDSC及其亚群水平降低与临床获益和/或良好预后呈正相关；相反,其水平升高与良好预后呈负相关42,46o共识7建议监测实体肿瘤患者常规治疗前后外周血MDSC及其亚群水平的变化，用于辅助判断疗效、评估预后（证据级别：B;推荐级别：弱）。细胞因子水平监测一、检测指标和方法推荐细胞因子是
36、介导抗肿瘤细胞免疫应答和肿瘤免疫抑制的重要介质细胞因子水平监测应涵盖参与不同生物学过程的多种类型，包括免疫激活因子如IL-2、IL-12、干扰素(interferon,IFN)-偿、免疫抑制因子如IL-Io、转化生长因子(transforminggrowthfactorzTGF)-B、IL-8等、促肿瘤因子如IL-6、IL-8和促炎性因子如肿瘤坏死因子(tumornecrosisfactor,TNF)-xIL-1xIL-6等。由于细胞因子分泌蛋白的特性利用流式细胞术结合流式微球阵列技术可对外周血细胞因子进行定量检测也可以根据实验室条件选择其他方;笈如化学发光由于不同方法学的检测结果具有一定差异
37、在不同时间点对同一患者细胞因子水平进行监测时，建议使用同一方法学和同一标本类型。某些细胞因子如IL-8,在血清标本中容易随着时间的变化出现升高，建议标本类型首选抗凝血浆，并且在离体4h内及时检测或及时分离血浆保存后检测。检测的细胞因子宜包括IL-2、IL-6、IL-8、IL-10、IL-12、IL-邛、TNF-aIFN-KTGF-等，推荐多项细胞因子联合监测，综合评估。二、临床应用选择(一)辅助评价细胞免疫功能状态，评估预后多种实体肿瘤患者外周血中免疫抑制细胞因子和促肿瘤细胞因子IL-6、IL-8、IL-10、TGF-等水平增高54z55,56；免疫激活细胞因子如IL-12水平下降56。同时,
38、在多种实体肿瘤中外周血免疫抑制细胞因子和促肿瘤细胞因子如IL-6、IL-8、IL-Io等的基线水平与肿瘤分期、肿瘤大小、疾病进展等呈正相关，与患者预后呈负相关54,55,56,57共识8推荐联合监测实体肿瘤患者基线时外周血参与不同生物学过程的多种类型的细胞因子包括IL-6、IL-8、IL-10、TGF-&IL-12等的水平，尤其是免疫抑制细胞因子和促肿瘤细胞因子IL-6、IL-8,用于辅助评价细胞免疫功能状态、评估预后（证据级别：A;推荐级别：强）。（二）辅助ICI疗效监测，评估预后在ICI治疗的多种实体肿瘤中，外周血免疫抑制细胞因子和促肿瘤细胞因子基线水平与预后呈负相关,以IL-6为主；同样
39、，治疗过程中免疫抑制细胞因子和促肿瘤细胞因子降低或保持在低水平，与持续临床获益和良好预后相关，以IL-6、IL-8为主9,58,59,60o共识9对于ICI治疗的实体肿瘤患者，推荐动态监测外周血免疫抑制细胞因子和促肿瘤细胞因子的水平，尤其是IL-6、IL-8,用于辅助筛选免疫治疗潜在受益者、监测疗效、评估预后（证据级别：A；推荐级别：强）。（三踊助监测irAE发生在多种实体肿瘤中,外周血免疫激活因子如IL-2、IL-12,促炎性因子IL-1等的基线水平与irAE的发生呈正相关；治疗过程中促炎性因子水平升高与irAE的发生亦相关,以IL-6为主61,62,63,64o细胞因子风暴是一种危及生命的
40、irAEoIL-6是发生细胞因子风暴的关键因子J细胞过度活化后释放IFN-怵口TNF-,促进多种免疫细胞大量释放IL-6,同时以正反馈方式继续活化T细胞，从而出现细胞因子TNF-aIFN-丫、IL-2、IL-邛、IL-Io等大量释放，导致多器官功能障碍。在报道出现细胞因子风暴的PD-1/PD配体1（PDIigand1,PD-L1）抑制剂免疫治疗的肿瘤患者中，几乎均出现外周血IL-6水平的增高，大多伴随其他细胞因子如TNF-a、IFN-丫、IL-Io等的增高65,66z67,68o共识10对于ICI治疗的实体肿瘤患者，推荐动态监测细胞免疫功能相关细胞因子包括IL-6、IL-2、IL-邛、IL-1
41、2等的水平,用于预测irAE;出现IL-6水平大幅增高，并伴有其他细胞因子如TNF-O.IFN-KlL-2、IL-I伊口IL-10的增高，应警惕细胞因子风暴的发生（证据级别：A;推荐级别：强）。综上本共识对外周血细胞免疫功能实验室检测指标在实体肿瘤中的临床应用选择建议见表5。5外周血物能免疫力能实验室检测书标在实体州6中的H5床应用选择建Ma启用力.芹c*vcya)i27B8皿证券万,三vBN3Tn:山川coyawainn86ax5awa)i9Kgcoxva)598IaHlA8agaaa*cdmAAMtW”EW蕾酎正耐力乜OMSIcmaiMu11BaM&awai4fiKfTiHKUB8KBBm
42、三FGDLYZTmarTCFRlLgBaA9ax*a*mHvavgaWWVrat7/aWaMD2A9paax*cD*三B5R*rMiMmt引CDvaMzawaxswcavMizcwazcw?aAttstw咫Wml的火平OMSAWan9Kvoxva)wa)uHava)3XDiibawcdmMfilAOMr(xn三wWM0Rb.SsmiM三4aBBMTHflXMW免度m,a.EEB3UWaWaM5WOR7IO3QlTaab化3WMrawcxaa4SwccRWi/aam7g4六HtlrygteRe西AXaxlcD*三rttB3aMawcD28(Ia7KifKfiaMTaif0ss?m1F.Wn.Ka
43、S靠mmsawA94*.a)*BdfUOWawaWCva)25au7CW3：CWMOCWrF08Q.IWrTKMBmOM8OCWWf!BrfWC三WB:bWtJKWT.CD,TKWIrKDCHlAWWfl.WO45RRCa*MM:faK-671SW三三,IMr三M;Wgiane结语和展望宿主细胞免疫功能与实体肿瘤的发生发展和治疗转归密切相关,但基于外周血的细胞免疫功能评估用于指导肿瘤免疫治疗监测尚处于起步阶段。本共识根据国内外研究数据,对外周血细胞免疫功能监测在实体肿瘤诊疗中的应用进行了归纳，提出T淋巴细胞亚群精细分型，MDSC亚群分析和细胞因子水平监测三类指标，并就其检测标志物、检测方案或方
44、法及临床应用作出推荐，以期指导临床合理选择免疫指标，综合评估外周血细胞免疫功能，辅助实体肿瘤的精准诊疗。但是，受现有研究规模限制以及各研究间结果差异，本共识尚不适合推荐统一的参考区间和临界值，建议实验室建立和/或验证个性化的参考区间及评价体系，必要时设立与年龄相关的参考区间。随着循证证据的完善和单细胞测序、T细胞受体测序等检测技术的成熟应用，更多的外周血细胞免疫标志物如T细胞受体多样性、Th亚群平衡性等将有望应用于临床。树突状细胞对于细胞免疫应答至关重要,但其主要通过淋巴导管在淋巴结和肿瘤组织中循环,外周血含量低,肿瘤引流淋巴结更适合作为其检测标本。基于外周血细胞免疫功能评估参数的复杂性建立外周血细胞免疫功能综合评估模型将具有更好的应用前
