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1、,Next-generation sequencing technology overview,Agenda,测序技术简史第一代测序技术第二代测序技术第三代测序技术,1 测序技术简史,1950,1960,1970,1980,1990,2000,2010,Invention of personal genome machine,Invention of optical mappingsystem,1977年，英国人Fred Sanger 发现，如果在DNA复制过程中掺入ddNTP，就会产生一系列末端终止的DNA链，并能通过电泳按长度分辨。 不同末端终止DNA链的长度是由掺入到新合成链上随机位置的
2、ddNTP决定的。 由此诞生了以Sanger命名的测序原理即双脱氧链终止法测序原理。,5磷酸,3羟基,3,5 -磷酸二酯键,核苷酸形成3,5-磷酸二酯键示意图,核酸序列形成的基础,“双脱氧末端终止”的含义,dNTP,终止物标记方法,因为颜色不同，4种终止物可以在一起进行反应。,3730 xl Sequence Map,2005,2006,2007,Birthday,Principle,Pyrosequencing,Sequencing-by-Synthesis,Sequencing-by-Ligation,Roche 454,Genome Analyzer/Hiseq 2000,ABI SOL
3、iD,Next-generation sequencing/Deep sequencing technology main platforms,454测序原理,测序反应以磁珠上大量扩增的ssDNA为模板，在每一轮测序反应中，依照T、A、C、G的顺序依次循环进入，每次只进入一个碱基。如果这种dNTP能与待测序列配对，则会在合成后释放焦磷酸基团。释放的焦磷酸基团会与反应体系中的ATP硫酸化酶反应形成ATP。生成的ATP和荧光素酶共同氧化反应体系中的荧光素分子并发出荧光。通过检测荧光信号释放的有无和强度，确定被测分子的序列。光信号由CCD摄像机检测并反应为峰。每个峰的高度（光信号）与反应中掺入的核苷
4、酸数目成正比。反应结束后，ATP和未掺入的dNTP由双磷酸酶降解，淬灭光信号，并再生反应体系。,454测序流程,待测DNA文库的构建将基因组DNA/cDNA片段打断至400-800bp，将用于后继的扩增测序的接头A和一段含有生物素的接头B连接到DNA片段上，会产生含有接头AA、AB、BB、BA四种DNA片段，然后与可结合生物素的磁珠结合，其中片段AA被洗脱掉，片段ABBABB结合到磁珠上，通过变性处理回收含有接头A和接头B的单链DNA。,EmulsionPCR将这些ssDNA分别单独与水油包被的直径大约28 m的磁珠在一起孵育、退火，由于磁珠表面含有与接头互补的寡聚核苷酸序列，因此ssDNA会
5、特异地连接到磁珠上。同时孵育体系中含有PCR反应试剂，因此可以保证每一个与磁珠结合的小片段都会在各自的孵育体系内独立扩增, 扩增产物仍可以结合到磁珠上。反应完成后，破坏孵育体系并富集带有DNA的磁珠。经过扩增反应，每一个小片段都将被扩增大约100万倍，从而达到下一步测序反应所需的模板量。,测序将携带DNA的磁珠与其他反应物混合物，放入PTP板中进行测序。PTP板上含有很多直径约为44 m的小孔，每个小孔仅能容纳一个磁珠，通过这种方法固定每个磁珠的位置以监测接下的测序反应。,454的特点,较高的测序通量，每个循环能产生总量为400-600 Mb的序列。提高测序读长，长度达到400 bp，使得后继
6、的序列拼接工作更加高效、准确。主要缺点是无法准确测量同聚物的长度。例如当待测序列中出现Poly(A)的情况下，测序反应中会一次加上多个T，而加入T的数目只能从荧光信号的强度来推测，有可能造成结果不准确。因此454技术主要的错误不是来自核苷酸的替换，而是来自插入或缺失。,2005,2006,2007,Birthday,Principle,Pyrosequencing,Sequencing-by-Synthesis,Sequencing-by-Ligation,Roche 454,Genome Analyzer/Hiseq 2000,ABI SOLiD,Next-generation sequen
7、cing/Deep sequencing technology main platforms,n=degenerate bases z=universal bases,SOLiD的特点,通量大成本低序列短Ligase的方式虽然能一定程度避免phasing/pre-phasing，但增加的复杂度也降低了效率灵活性差，对小数据量测序不适用Two-base coding,2005,2006,2007,Birthday,Principle,Pyrosequencing,Sequencing-by-Synthesis,Sequencing-by-Ligation,Roche 454,Genome Ana
8、lyzer/Hiseq 2000,ABI SOLiD,Next-generation sequencing/Deep sequencing technology main platforms,2 Hiseq 2000（Solexa）测序原理 Solexa是一种基于边合成边测序技术(Sequencing-By-Synthesis，SBS)的新型测序方法。通过利用单分子阵列实现在小型芯片(Flow Cell)上进行桥式PCR反应。由于新的可逆阻断技术可以实现每次只合成一个碱基，并标记荧光基团，再利用相应的激光激发荧光基团，捕获激发光，从而读取碱基信息。,可逆阻断技术,合成第一个碱基,Cycle 1
9、:按顺序加入反应试剂,清除未反应的碱基和试剂,激发碱基荧光并收集荧光信号 去除阻断基团和荧光基团,Cycle 2-n:重复前面的步骤,基于SBS的Solexa测序技术,3 Hiseq 2000测序技术流程,制备芯片,模板杂交桥式PCR扩增测序引物准备测序,2,测序,测序生成 base calls,3,3.1 文库制备 Solexa有三种不同的测序种类：Single-Read Sequencing 单向测序Paired-End Sequencing 双向测序Indexed Sequencing 混合样品测序这三种测序类型的文库构建大体一致，主要区别在于接头。,Single-Read Sequen
10、cing,Fragment DNA,PCR enrichment,P7,PCR enrichment (cont.),Paired-End Sequencing 双向测序Indexed Sequencing 混合样品测序,3.2 芯片制备和测序,Cluster 生成步骤:固定扩增线性化 阻断引物杂交,Cluster 生成化学步骤,cBOT,Flow Cell,进样孔,出样孔,Single-Read Sequencing(SR, 单向测序),碱基片段杂交固定,diol,diol,1st cycle 变性,碱基片段扩增成簇,Cluster 扩增完成,OH,diol,diol,OH,Cluster
11、Station 结束,NaIO4,每一个基因簇就是信号收集照片上一个亮点,通过荧光信号读取序列信息,T T T T T T T G T ,T G C T A C G A T ,通过荧光信号读取序列信息,3.3 测序,Paired-End Sequencing (PE, 双向测序)和Indexed Sequencing,SR与PE的Flow Cell接头对比,Single Read,Paired End,OH,OH,Grafted flowcell芯片上的接头,U,P7 P5,DNA片段杂交和固定,1st cycle denaturation 变性,碱基片段扩增成簇,Cluster Station 结束,Cluster Amplification扩增后的簇,Paired End 双向测序,SBS进行测序,The advantage and disadvantage of three platform,第三代测序技术,单分子测序技术,Heliscope,Pacific Biosciences,Life Technologies,Ion Torrent,Oxford Nanopore,基因组光图谱系统,谢谢！,谢谢观赏！,
