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1、1,结合遗传科实验室分析相关“质量管理”,2,质量管理Quality control,临床实验室为了保证检验结果实事求是的反映客观存在而建立的操作程序体系,分析前,分析后,分析中,影响因素,3,标本检验结果的误差,我们往往过分紧盯检验人员“实验过程”(分析中)的质量情况!,10,4,3,. .,. .,4,实验前期过程复杂、涉及面广,不受控制,分析前,疾病诊断及检验项目选择正确性,1.检验项目选择,2.采集标本,采血容器用错、内各种抗凝剂、促凝剂、表面活性剂及一些微量金属,压脉带绑扎过久、采血量、采血器材选择,除非生产商另有说明,否则无论何种采血管应缓慢倒转所有含添加剂的采血管(枸橼酸钠除外)
2、至少5-10次,含枸橼酸钠的采血管应倒转3-4次,离心前样品应凝固,不建议挑除血凝块。若凝固时间不够长,纤维蛋白形成可影响多个仪器系统,导致结果偏差,可选用含促凝剂的采血管加快凝血。【普通管室温(20-25)30-60分完全凝血,温度低或冷藏则时间延长】,除非文献中建议,否则不冷藏全血样品,因为冷藏样品抑制血细胞代谢,稳定了某些热不稳定性组分。,除非有确凿证据说明长时间接触不会导致结果偏差,否则应尽快用物理方法分离血清或血浆与细胞。,分离的血浆/血清室温下保存时间不可超过8小时若在8小时内无法完成检测,则应(2-8摄氏度)冷藏血清/血浆 48小时内无法完成检测则血清/血浆应-20摄氏度下冷冻保
3、存,送检标本质量缺陷的隐蔽性,4.标本运送,血液,尿液,护士是否按前述规则操作?,前段、中段、末段有区别3小时前与3小时后结果有变化,3.标本处理,除非有经验证明的文献指出偏离标准不会影响结果,否则应严格遵守生产商的指南,5,综上我想到的 ,采好血的管最好不要放置到最后统一离心处理。除非有要求,否则不冷藏,更不可过夜!用正确的容器;恰当且及时的分离血清/血浆;放到冰箱里的应该是:血清/血浆,是该冷藏还是冷冻,要做出相应处理; !我想如果有一个小型便捷的离心机,放在采血口旁边,能很好的完成这些。 !优生五项、不孕抗体一周检测一次,不应冷藏保存,同样应像产前筛查一样,-20储 存,避免反复冻融。试
4、剂盒说明书也有提到。血清/血浆完成检测的期限: 室温放置应在8小时以内。冷藏放置应在48小时内。 而48小时以外需-20冷冻保存。我们九联检的标本有的需要过夜保存的,应及时分离血清,冷藏保存! 而染色体冷藏时间越长肯定会越难培养。巨细胞尿液、乳汁标本;手足口、STD、HPV分泌物标本因为有细胞保存液,可冷 藏保存较长时间。,6,分析中-1,硬件设备和技术对实验室未来关系重大(不进则退),RT - PCR(实时荧光聚合酶链式反应),针对病原体DNA特异保守核酸序列进行扩增,实时荧光核酸恒温扩增检测技术(SAT技术 上海仁度)上海仁度由美籍华裔科学家与国内企业家共同创建,拥有核酸诊断技术自主知识产
5、权,RNA扩增技术(针对单链RNA目标序列),转录介导的扩增技术(TMA技术)【美国 HOLOGIC Gen-Probe公司】,基于核算序列扩增检测技术(NASBA技术)法国BIOMERIEUX公司,国内外类似技术,7,扩增检测技术,国外,已超过技术成为病原体诊断主流美国85%顶级医院使用RNA扩增技术检测优生系列的CT/NG(定性检测)。HOLOGIC Gen-Probe公司的TMA(APTIMA Combo2),是目前市场上最好的CT/NG检测产品,无竞争对手。TMA用于CT/NG的检测是目前行业公认的“金标准”。新方法学CT/NG的产品临床试验都必须选择TMA做参比试剂。,在国内,由于价
6、格昂贵开展使用的医院少,还未发展起来北京北京协和医院北大三院北大医院北京儿童医院。上海上海瑞金医院上海长征医院上海复旦妇产科医院上海儿童医学中心。广州中山大学附属第一医院中山大学附属三院南方医院广州市妇女儿童中心广州军区总院。,8,示意图欠准确,9,PCR,90以上解链变性(解螺旋单链),55退火(复性),引物延伸,用带荧光的探针与产物结合,机器读荧光值,计算产物浓度,10,PCR温度曲线图,变性,延伸,退火,11,1条链40次循环扩增数量(理论值),12,SAT的优势(RNA扩增),一个细胞内有一个或几个DNA copy/cell,而有核糖体RNA 约104 copy/cell,其中蕴含的目
7、标RNA远大于DNA的含量,灵敏度极高。恒定42下,仅一条靶标RNA核酸短链首先逆转录产生一条单链cDNA cDNA转录生成一个双链DNA利用T7RNA多聚酶该双链DNA能产生1001000个RNA拷贝每一条RNA再从反转录开始进入下一个循环; RNA数量是按1-100-10000-1000000即1102103递增,DNA以2n-1递增,可见RNA扩增效率极高,整个扩增需10-15分钟。带有荧光标记的探针和这些RNA拷贝特异结合,产生荧光;机器读取荧光值计算产物浓度。,恒温扩增原理图,恒温42,13,SAT技术优势,一、先进的恒温扩增技术 扩增在一个温度下进行(42),无需热循环。二、领先的
8、RNA检测技术 SAT技术直接以病原体特异性RNA为扩增靶标,以扩增产物RNA为检测靶标,因 RNA的存在时间短,病原体死亡RNA就很快降解,对活动性进行性感染有诊断意义, 与临床相关性好,=实验室的“培养”三、更高的检测灵敏度和准确性 SAT技术的扩增效率极高,检测灵敏度和准确性远高于其他核酸检测技术。四、有效减少假阴性结果 SAT技术采用M-MLV逆转录酶和T7RNA多聚酶进行核酸扩增,相对于其它核酸扩 增技术,反应抑制物更少,有效减少假阴性结果。五、有效的解决了扩增产物的污染问题 扩增产物的污染是核酸检测的控制难点。SAT技术采用实时荧光闭管检测,使污 染得到有效控制;即使污染产生,由于
9、扩增产物为RNA,环境中极易降解,从而大幅度 提高检测结果的可靠性。六、大大降低了核酸扩增实验室的要求,14,一、实践经验告诉我们,实验室要高效、准确的完成各种繁重的工作任务,仅仅依靠领导和共产党员的模范带头作用是不够的,必须依靠科学管理,将人力资源进行科学分配,实施全员岗位责任制,科主任起领导、管理的作用,而不是忙于日常事务,忙于每天替班、接班。二、临床实验室现在面临一个矛盾:“检验质量”和“经济支出”,若单纯追求经济效益使用价廉质差的试剂、材料、质控品、标准品,必然造成检验质量的下降,肯定是不对。 经济支出管理的原则是以保证检验质量为前提,其次是经济效益。三、质控品和标准品的选择是影响检验
10、质量核心和关键,不能以次充好,做“室内质控”和“室间质评”无论做多少次,也不得巧立名目乱收费。,分析中-2,在实验室中人的重要性-人力资源管理,15,正态分布,在医学领域中有许多变量的頻数分布是中间(靠近平均数)的頻数多,两边的頻数少,越靠近平均数,越符合正常的机率高,而且左右对称,此种分布叫做正态分布。 那么医学卫生工作中又有许多指标近似服从正态分布,相应的我们实验室中所测样本数据中的随机误差等也服从正态分布(这是实验室做质量控制,将随机误差控制在均数加减N倍标准差范围内的理论基础) 还有一些数据虽不服从正态分布,但可以通过转换,如求对数log值转换后服从正态分布,被称为对数正态分布,实验室
11、所测样品不论单位是IU/ml或Copies/ml,浓度均较高,不容易计算,故都经log转换后再分析。,16,17,平均数、标准差、变异系数,描述定量资料分布规律的指标有三类一类是:平均数X(集中趋势)一类是:标准差S(离散趋势)一类是变异系数CV%.变异系数 CV =( 标准差 S 平均值 X) 100%,18,平均数X的公式是:所有样本数据之和(x)除以样本个数n.它是用来描述一组资料的集中趋势的。,算数平均数X:,19,标准差S是怎么来的:,S是用来表示样本资料的离散趋势的,实际上是求每个样本值与平均值差值的平均数。 一、公式是所有数据减去平均数(离均差)之和除以n-1(自由度)。 缺点是
12、离均差之和为零! 二、为了解决,公式改为离均差先平方再相加除以n-1(自由度)。 缺点是数据平方之后太大,不利于统计处理! 三、数据再开方求出算数根,这就是最终的标准差S ,标准差S和算术平均数是有相同单位的,某个数据距离均数的距离可以用1S、2S、3S来表示! 四、控制限 是判断质控品测定结果允许范围的上、下限,通常以标准差的倍数表示,20,平均数就是绝大多数正常人群检测后的数值,人为的定一个区间95%或99%,超过的在统计学上视为小概率或不可能发生的事件,视为异常。 标准差就是观察检测值偏离整体均数的计量单位,1S处的数值,大概处于整体的68%以外,1.96S大概处于95%以外,2S是95
13、.45%,3S是99.73%。 医学上制定参考值范围通常把绝大多数正常人的某指标值范围称为正常值范围,那这个绝大多数到底是选一个多大的区间合适呢?多少呢?90%、95%、99%?我们认为根据实际情况一般选择95%,95%的正常人的值认为是正常的,超过的则异常。,21,XS范围曲线所占頻数是68.27%X1.64S范围曲线所占頻数是90.90% X1.96S范围曲线所占頻数是95.00%X2S范围曲线所占頻数是95.45%X3S范围曲线所占頻数是99.73%,22,变异系数 CV,CV=SD / X 100% 标准差S描述的是数据相对均数的绝对离散程度变异系数CV是描述数据相对均数的相对离散趋势
14、CV的优势:比较度量衡不同的多组资料相对于各自均 数的离散趋势(变异度)。比如一组身 高,一组体重、一组肺活量,各组数据虽 单位不同,但可用CV来比较它们的相对离 散趋势,标准差大,不一定代表总体的离 散趋势就大。,标准差,平均值,/,23,统计质控方法,实验变异的基线(X)的测定:OCV(optimal conditions variance)质控物在最佳条件下的变异最佳条件是指在仪器、试剂和实验操作者等可能影响实验结果的因素处于最佳时,连续测定同一浓度同一批号质控物20批次以上,即可得到一组质控数据,经过计算得出均值、标准差和变异系数CV,此CV即为OCV。RCV(routine cond
15、itions variance)常规条件下的变异常规条件是指在仪器、试剂和实验操作者等可能影响实验结果的因素均处于通常的实验条件下,连续测定同一浓度同一批号质控物20批次以上,即可得到一组质控数据,经过计算得出均值、标准差和变异系数CV,此CV即为RCV。 所有数据无论是否超过3S,均应用于上述统计计算,否则标准差变小,导致以后的实验数据更容易失控: RCV与OCV接近或小于2倍OCV时,则RCV是可以接受的,否则就需要对常规条件下的操作水平采取措施予以改进。 这20批次的测定值间的变异即称为批间变异!,24,精密度,精密度是指在规定条件下相互独立的检测结果间的一致程度。它表示测量结果中的随机
16、误差大小。 它分三种:(1)批内精密度(批内变异) 是指对同一标本用同一方法在相同条件 下多次重复测定所得的各次结果之间或各次结果与均值之间的符合程度。在重复检测时它的变异性是最小的。 (同一质控品提取完毕后,多次重复上机检测所得结果) (2)批间精密度(批间变异) 是指在同一天内(日内)几个不同批重复检测同一标本时的变异性,它通常比批内变异性要高。 (同一质控品在一日内重复提取数次上机检测所得结果)(3)日间精密度 是在不同天重复检测同一样本所得的变异性。这种变异性是分析性能最实际的评价,因为它包括了不同操作人员、仪器日间、实验室温度或其它条件的变化对方法性能的影响。 (同一质控品在不同日期
17、内重复提取数次上机检测所得结果),基本概念,25,在临床基因扩增检验中,按上述步骤通常会很繁琐,希望直接能进入RCV的测定计算,如果有一定的实验工作基础,应该说是可以的。因为OCV从某种意义上来说,指的是试剂盒或方法学本身的批间变异,可以从其他一些途径得到,如试剂的生产厂家或文献报道。基因扩增结果的原始数据很大,故使用对数值来进行质控统计分析要更为方便一些。,26,室内质控基本概念,室内质量控制:是由检验人员对实验室的工作和测定结果进行连续评价,以决定工作和结果的可靠性是否达到发出报告规定的一系列活动。主要目的是保证日间结果的一致性,因此要求每个项目具有一定的重现性,其以精密度来衡量。,27,
18、室内质控,室内质控的目的是监测测定过程,当出现医学上重要的误差时,用适当的质控方法警告分析人员。一般来说,实验室通过测定质控品来检查检验结果的质量,并将质控结果画在质控图上,观察质控结果是否超过质控限来决定是否失控。实验室最常用的是Levey-Jennings质控图。,28,误差,给你一个质控图你会判断什么是系统误差什么是随机误差吗,?,心里有概念吗!,29,误差是指测量结果减去被测量的真值所得的差,称为误差。 随机误差 是由于某些偶然原因引起,这种误差难以预料或不可控制。 特点:标准差增大,有的测定值落在左边,有的落在右边,简言之随机误差在质控图上的特点就是忽左忽右,没有规律,多次试验后,发
19、现检测值在均数两侧对称分布(正态分布); 主要来自能影响结果的操作误差、实验条件的改变等。标本多次重复测定可减少偶然误差,提高精密度。 系统误差 是指一系列分析测定结果对真值或靶值存在同一倾向的误差。 其特点是重复检验时,常按一定规律重复出现,即测定结果与靶值相 比,结果总是偏高或偏低,增加测定次数也不能使之消除; 主要来源于方法误差仪器误差、试剂误差、实验器具误差、恒定的环境误差等。消除系统误差能提高测结果的准确性。,基本概念,30,标准品 是指一定量的纯品溶解在容量瓶内稀释至容积刻度的标准液,标准品的值由称量和容积计算确定。(定量)校准品 是指定用来校准某检测系统的物质,它有在考虑了基质效
20、应的情况下,人为赋予的值。校准品专用于某一检测系统;同一个校准品用于不同仪器时,应该有不同的校准值。(校准机器)质控品 专门用于质量控制目的的标本或溶液,不能用作校准。(控制检测质量),基本概念,31,干扰 指标本中某些非被测物质本身不与试剂反应,但以其它方式使测定结果偏高或偏低,这种现象称为干扰,这些非被测物质称为干扰物。例如患者服用维生素C达到一定浓度可干扰葡萄糖氧化酶法,使血糖测定结果偏低。基质 是指标本中除分析物以外的一切组成成分。基质效应 是指标本中除分析物以外的其它成分对分析物测定值的影响;或者是指基质对分析方法准确测定分析物能力的干扰。检测系统 是指完成一个检验项目的测定所涉及的
21、仪器、试剂、校准品、耗材等的组合。,基本概念,32,质控规则 是解释质控数据和作出控制状态判断的规定,一般用符号AL表示,A是质控测定值的个数或特定统计量的缩写,L是控制界限,如12s 、13s、22s、R4s、41s、10 x等。符 号 定 义12S 一个质控测定值超出2s控制限。13S 一个质控测定值超出3s控制限。22S 两个连续的质控测定值同时超出+2s或2s控制限。R4S 同一批测定中,两个不同浓度质控物的测定值之间的 差值超出4s控制限。41S 四个连续的质控测定值同时超出+1s或1s控制限。10 x 十个连续的质控测定值同时处于均值的同一侧。在控 指根据质控规则判断质控品检测结果
22、没有符合失控规则的情况。失控 指根据质控规则判断质控品检测结果有符合失控规则的情况,基本概念,33,质控品,1.质控品的种类: 根据物理性状不同分为冻干质控品、液体质控品和混合血清等。 根据生产商是否赋值分为定值质控品和非定值质控品。 不论定值还是非定值质控品,用户在使用时,必须用自己的检测系统确定自己的均值和标准差。厂家提供的均值是基于人家实验室检测系统和环境测出的,他标示的预期范围只是告诉用户,只要你的测定值在预期范围内,说明他的控制品是好的,千万不能将预期值范围认为是控制的允许范围。,34,35,2.质控品的质量要求:、质控品应为人血清基质;基质效应小;、生化、免疫等质控品在规定保存条件
23、下至少稳定一年,冻干品复溶后室温下稳定时间大于8小时;、临床实验室开展统计过程分析其目的是控制检验结果的重复性。检验结果的变异由检测不精密度和更换的各瓶控制品间差异的综合因素导致。只有将瓶间差异控制到最小,才能使检测结果间的变异真正反映日常检验操作的不精密度。日常控制品若是冻干品,用户对冻干品的复溶要遵循严格的复溶操作标准化。如:质控品均匀溶解,用AA级容量移液管,优级的去离子水,对瓶内冻干物湿润和混匀的动作与时间要求都有明确规定。市场上已提供液体的控制品,它消除了复溶过程引入的误差;缺点是价格昂贵,而且总含有防腐剂,会引入新的基质效应带来的误差。 液体控制品虽昂贵,但开瓶后可稳定14-30天
24、;而冻干的控制品复溶后通常只稳定48小时。液体控制品的稳定可减少浪费,消除瓶间差,也消除了操作人员原来复溶过程的操作误差,所以不少实验室愿意采用。、质控品应尽量保证一个批号一年左右用量,这样才能在较长时间内观察控制过程的质量变化,也减低不断应用新批号质控品的成本和工作量。,36,3.冻干质控品的复溶与储存,须严格按其说明书执行,要点有:按生产商推荐方法储存。复融时从冰箱中取出,放室温约30待与室温平衡后,再小心打开瓶塞,防止质控物丢失。用经校准的移液管,用符合厂家要求的稀释液准确稀释。盖上盖子,室温静置约15,期间温和转动瓶子让其完全溶解,取样前,温和颠倒瓶子数次,以保各成分均一。,37,质控
25、品的设置、数量及排列顺序,临床基因扩增检验的室内质控中,每次检测究竟使用几个质控样本?并排在哪个位置最为适宜呢?这个问题非常实际,理论上说,为最大可能的检出实验的随机和系统误差,应每隔几份临床标本插入1份质控样本,均匀分散于临床标本中,与临床标本一同处理(核酸提取)。但考虑国内实际和成本效益,如果扩增的样本量不是特别大如小于30,弱阳性和阴性质控各1份,标本数量增加,质控物数量相应按比例增加 定性测定 有一份接近cut-off(定性阳性判断值copies/ml) 的弱阳性和一份阴性质控样本应可以满足要求。 定量测定 要根据实验的测定范围,采取高、中、低三种浓度 的质控样本。至于测定中的排列顺序
26、,可排于标准品或校准品之后,临床样本之前。但在扩增仪中的位置,不应永久性的固定的在一个孔,而应在每次扩增检测时,进行相应的顺延,以使在一定的时间内,可以尽可能的监测每一个孔的扩增有效性。,?,38,需要指出的是,临床基因扩增检验室内质控与其他临床检验室内质控相比,应增加一个监测污染发生的阴性质控设置,它不用参与统计学方法来分析,但对于临床基因扩增检验必不可少!具体方法是:一个阴性原血清质控样本; 一个由核酸提取过程中带入的一个空管,内加水来模拟标本; 一个仅含扩增反应混合液的管以水代替核酸提取样本。阴性原血清质控样本功能: 监测实验室的以前扩增产物是否已产生污染。 实验室操作所致的标本间的交叉
27、污染,具体如:强阳性标本气溶胶经加样器所致的污染。强阳性标本经操作者的手所致的污染。使用翻盖离心管核酸提取时在较高温温育时盖子崩开等。 扩增反应试剂的污染。空管作用是其内不含可能有的扩增抑制物,因此对污染的反应更为敏感,但因阴性原血清质控样本含蛋白、脂类的特殊性,具体操作细节还是有所不同,不能替代。仅含扩增反应液的A管加样前(水)不要打开,另取一个或多个B空管,打开盖子静置于标本制备区30-60分钟,然后加入扩增反应液以及以水替代核酸样本扩增,A管为阴性,而B管扩增出现阳性,说明实验室以前扩增产物的存在。,39,1)稳定性较好的质控物: (1) 先建立暂定均值和质控限。在“旧”批号质控物使用结
28、束前,将新批号质控物与“旧”批号质控物同时进行测定约一个月,获得至少20个新质控物的测定结果,计算其均值、标准差和变异系数,剔除超过均值3S的离群值,重新计算余下数据的均数和标准差,作为下一个月新质控物室内质控图的均值和标准差;此月结束后,将该月的在控结果与前20个质控测定结果汇集一起,计算它们的累积均值和标准差,作为再下一个月质控图的均值和标准差,绘制该月质控图。 (2) 重复上述过程,连续累积三至五个月,作为该质控物在有效期内的常规均值和标准差。 2)稳定期较短的质控品: 在3至4天内,每天分析每水平质控品3至4瓶,每瓶进行2至3次重复,收集数据计算均值、标准差和变异系数,剔除离群值,重新
29、计算其均数和标准差,其中均值作为质控图的均值。 标准差获得 由于使用的数据量越大,标准差估计值就越好,因此,不推荐用上述对稳定性较短的质控品建立均值的方法来建立其标准差,而用以前变异系数(CV%)来估计。 以前变异系数是几个月数据累积的结果,考虑了检测过程中更多的变异。新的标准差等于其均数乘上以前变异系数。,质控品的均值、标准差、变异系数获得,40,内质控(internal control,IC),临床标本中有多种成分可能会通过与酶反应成分的相互作用而抑制核酸扩增,如血红素,以及脑脊液、尿液、痰液中也存在DNA聚合酶抑制物,以及降解靶核苷酸的核酸酶,但抑制物的确切成分尚不清楚。对临床标本及核酸
30、提取中可能存在的抑制/干扰物的质控措施,可通过内质控(通常也称为内标)来检测。这种内标最好在临床标本制备前加入,然后与标本中靶核酸一起经历核酸提取过程,成为核酸提取过程中的质控。内标和样本靶核苷酸都未出现扩增,说明抑制物的存在,处理措施最简单的是稀释法,但不能稀释过大至浓度低至测定方法的下限以下。内标未出现扩增但靶序列出现扩增,则可能是靶序列浓度过高,内标受到抑制,同样可用稀释方法来证明这一点。,41,1924年,美国休哈特(W.A.Shewhart)首先提出质控图。 (在提出质控图之前,人们曾试图采用各种方法来预测质量变动的预兆,但均未获成功,工业品的不合格率相当高)20世纪50年代,Lev
31、ey和Jennings把质控图引入到临床检验中。 (质控方法是建立在单个质控品双份测定值的均值和极差的基础上)Henry和Segalove对L-J质控图(X-R)进行了修改,以20份质控品的试验结果,计算均值和标准差,定出质控限,每天或每批随患者标本测定质控品一次,将所得的质控结果标在质控图上。这各质控图一般称为单值质控图,也就目前大家所熟悉的L-J质控图。,质控图,42,Levey-Jennings质控图 的演变过程,最早的L-J质控图,每天要做两个控制品检测,只要有一个超过 13S控制限即为 失控;(假失控率0.3%)修改的L-J质控图,每天只做一个控制品检测,只要有一个超过12S控制限即
32、为 失控,这是L-J质控图统计学控制方法确定的。 因为仅检测一个控制品超出12S假失控的概率为5%。假若是两个不同浓度控制品同时使用,任一个控制值超出2SD控制限,不能判断为失控,因为任一个控制品的控制值超出2SD控制限的可能性升为10%,会增加结果属于正常的假失控错误率。改良的L-J质控图,是在控制图上同时标出12S 和13S控制限。 两个水平控制品中,任一个超出13S可立即确定失控,因为 0.3%假失控率很小,可以认为,一旦出现,即真有问题。 两个水平控制品中,任一个超出12S,不能判断失控,仅为警 告限,继续观察。 改良的L-J质控图,其实为将来Westgard多规则质控图奠定基础。,第
33、一代质量控制技术,43,一次试验中如果使用一个控制品,则应以2S为失控限。超过2SD即为失控,不可以发报告,假失控的错误概率为5%。假若是两个不同浓度控制品同时使用,任一个控制值超出2SD控制限,不能判断为失控,因为任一个控制品的控制值超出2SD控制限的可能性升为10%,三个质控物则假失控率为15%!如果使用两个不同浓度的控制品则应以3s为失控限。超过3SD即为失控。,Levey-Jennings质控图 基本的统计学含义,44,45,补充一句:若样本值落在3s的失控线上,不算失控;若落在2s的警告线上,不视为报警! 其它质控方法同样适用此规则!,46,Levey-Jennings质控图存在不足
34、,以2SD为失控限,有5%的假失控率,只要超过2SD就认为失控。 随着自动化控制仪器的引入,电脑严格按照程序执行质量控制,按此超过2SD,仪器会自动报警,就必须寻找原因,排除故障,方可重新启动。但是究竟是失控还是95%以外的偶然概率,无法分辨。那么经实验证实,若每批用两个控制品,同时使用3SD和2SD两个控制规则,则判断为“失控”的次数之比约为3SD:2SD=1:9仅以2SD为控制规则灵敏度 特异度 仅以3SD为控制规则灵敏度 特异度 这两种规则不论单独还是联合使用,均应小心判断!仪器的引入,使第一代质量控制技术显得粗糙、落后!,47,如必须采用以2SD为失控线的话,为了弥补5%的假失控率,若
35、以2.5SD为失控线常可获得较好的控制效果!,48,Westgard多规则控制方法,第二代质量控制方法,Westgard建议使用两个控制品,浓度一高一低,形成一个范围的控制(没有条件 也可只用一个控制品,但有很多局限性)。2.在控制图上绘制7条平行线。均数、均数1S、均数2S、均数3S。3.将所有规则以符号表示,便于使用。规则以符号AL来表示,其中A为质控测定中超 出质量控制限的测定值的个数,L为控制限,通常用均值或均值13SD来表 示。 当质控测定值超出控制限L时,即可将该批测定判为失控。 常用的13S质控规 则,其中1为原式中的A,3s为原式中的L,表示均值3s,其确 切的含义为:在 质控
36、测定值中,如果有一个测定值超出均值3s范围,即可将该批测定判 为失控。4.Westgard多规则控制方法中,将12S仅作为警告规则,要检查一下,但不是失控规 则,这样充分利 用12S对误差检出的灵敏性高,同时又限制了它对误差识别特异 性差的弱点,它只 是首先指出可能有问题,最后还要经后续的其它规则判断。5.经过选择,将13S,22S,R4S,41S,10 等列为失控规则,其中既有对随机误差敏 感的,也有对系统误差敏感的。结合在一起,大大提高了多规则的控制效率。6.将各规则合在一起,形成了可执行的,逻辑判断检索程序。,改良的L-J质控图,49,Westgard多规则,通常有六个质控规则,即12s
37、,13s,22s,R4s,41s,10X质控规则,其中12s规则只是在手工作业时作为警告规则,启动其他质控规则以助于数据的快速判断。在进行质控状态的判断时,只有当所有质控规则判断分析批在控时才决定分析批在控;只要其中之一的质控规则判断为失控就被认定为失控。 在实践中常由规则13S和R4S检出随机误差,而由22S,41S ,10X规则检出系统误差。当系统误差非常大时,也可由规则13S检出。,50,Westgard多规则误差检索程序,51,Westgard常用的质控规则,12S警告规则:1个质控测定值超过X2S质控限时为警告界限!13S失控规则:1个质控测定值超过X3S质控限为失控,观察随机误差。
38、22S失控规则:对系统误差敏感。 同一浓度水平控制品连续两次控制值同方向超出X+2S 或X-2S限值, 是失控表现。 在一批检测中两个浓度水平的控制值同方向超出X+2S或X-2s质控限为失控。R4S失控规则:是随机误差。当同一批内不同的质控物,一个质控物测定值超过X+2S限,且另一个测定值超过X-2S限时,判断该批为失控;不能报告病人的测定结果。(要求一定是同批次,如果发生在两批检测中,就不是该多规则的R4S )。,52,Westgard常用的质控规则,41S失控规则:有连续4次的控制值超出了X+1S或X-1S的限值,是系统误差。 同一浓度水平控制品连续4次控制值同方向超出X+1S 或X-1S
39、限值,是失控表现。 在一批检测中两个浓度水平的控制品同时连续各有2次的控制值同方向超出X+1S或X-1s是失控表现。10X失控规则:有连续10次控制值在均值的一侧,是系统误差的表现。 同一浓度水平控制品连续10次控制值在均值的同一侧,是失控表现。 两个浓度水平的控制品同时连续各有5次的控制值在均值的同一侧,是失控表现,53,12S警告规则:1个质控测定值超过X2S质控限时为警告界限!,54,13S失控规则:1个质控测定值超过X3S质控限为失控,观察随机误差。,55,22S失控规则:对系统误差敏感。 同一浓度水平控制品连续两次控制值同方向超出X+2S 或X-2S限值, 是失控表现。 在一批检测中
40、两个浓度水平的控制值同方向超出X+2S或X-2s质控限为失控。,56,R4S失控规则:是随机误差。当同一批内不同的质控物,一个质控物测定值超过X+2S限,且另一个测定值超过X-2S限时,判断该批为失控;不能报告病人的测定结果。(要求一定是同批次,如果发生在两批检测中,就不是该多规则的R4S )。,57,41S失控规则:有连续4次的控制值超出了X+1S或X-1S的限值,是系统误差。 同一浓度水平控制品连续4次控制值同方向超出X+2S 或X-2S限值,是失控表现。 在一批检测中两个浓度水平的控制品同时连续各有2次的控制值同方向超出X+1S或 X-1s是失控表现。,58,10X失控规则:有连续10次
41、控制值在均值的一侧,是系统误差的表现。 同一浓度水平控制品连续10次控制值在均值的同一侧,是失控表现。 两个浓度水平的控制品同时连续各有5次的控制值在均值的同一侧,是失控表现。,59,图一,图二,?,60,从两个图表看,图1的数据所反映出的检测系统虽然存在系统误差,但它很稳定,对检测结果的影响也不大。图2的数据所反映出的检测系统的稳定性相比图1应该更差,对检测结果的影响可能也会更大。但这两个图都是在控的!这是什么原因呢?难道是westgard质控规则的建立有问题?,61,10X,12S,13S,41S,R4S,22S,62,图三,从逻辑图我们可以看到:当出现失控时,必然已经有了12S的表现,以
42、后任何一个质控规则的解释都必须以12S为先导原则,必须连同12S表现在一起才可判断为失控。 有了以上对多规则质控规则的正确理解,我们再来判断图一、二是否属于失控数据?答案当然在控!那么,怎样的质控数据才符合“10X”这一失控规则呢? 从图三可以看出,当出现连续10次结果落在平均值(靶值线)的一侧,且必须出现12S,才算10X失控;若未出现12S,则不能判断为失控。(R4S、41S等质控规则同样适用。),63,几种不同的质控图画法,64,一、直接法,?能不能同时标出两个不同浓度数值的质控物,65,二、数据转换后制成控制图,原始数据过大,经log转换便于计算,66,3435=34+5 106109
43、=106+9NxNy=Nx+y698648923577858165490675784659= ? Nx Ny= Nx+y 10 x10y=10 x+y,X和Y值在质控图上比较容易划出来,比较起来也容易,67,12.04,4.36,8.20,4.36,0.52,-3.32,-7.16,原始数据对数转换后画质控图,Log值,68,三、表格式质控图,测定项目 质控物浓度 质控物批号 均值(X) 标准差(S) 填表人,表格式质控图也可同时记录多个质控品,便于手工记录,每批测定后可将质控物测定值填入表格中的相应格内,再根据质控规则决定该批测定是否在控,同时记录存在的问题及解决措施。,69,四、Z 计分质
44、控图,用于使用多个质控物(如高、中和低浓度)进行质控的情况下,使得在同 一质控图上同时记录不同质控物的结果成为可能。Z=(Xn-均数X)/S,“Z 计分”的实质是计算质控品测定值偏离均值相当于多少个标准差。以“Z计分”值作图,与质控物的浓度大小无关,因而其可用于多个质控物的同时作图。,70,五、“即刻法”质控,即刻法又叫Crubs异常值取舍法。对于基层医院有些项目不是每天做,有的项目好几天才做一次,以及有效期较短的试剂盒的项目,用上述方法计算获得平均数和标准差有很大的难度。采用Crubs法,只需连续测定三次,即可对第三次检验结果进行质量控制。 具体计算方法如下:(1)计算出测定结果(至少3次)
45、的平均值和标准差(2)计算SI上限值和SI下限值: SI上限=(X最大值X)/s SI下限=(XX最小值)/s (3)查SI表,将SI上限和SI下限与SI值表中的数据进行比较,-,-,71,“即刻法”质控结果判断,当SI上限和SI下限值n2s时,表示处于控制范围之内,可以继续进行测定,并重复以上计算;当SI上限和SI下限有一值处于n2s和n3s值之间时,说明该值在2s3s范围,处于 警告 状态;当SI上限和SI下限有一值n3s时,说明该值已在3s范围之外,属失控。数字属于失控状态应舍去,重新测定该项质控品和病人标本。舍去的只是失控的这次数值,其他次测定值仍可继续使用。 当检测的数字超过20次以
46、后,可转入使用常规的质控图进行质控。更换质控品 拟更换新批号的质控品时,应在旧批号使用结束前与旧批号质控品一起测定,建立新的均值和标准差。绘制质控图及记录质控结果 根据质控品的均值和标准差绘制Levey-Jennings控制图(单一浓度水平),或将不同浓度水平绘制在同一图上的Z-分数图,将原始质控结果记录在质控图表上。保留打印的原始质控数据。,72,73,六、Youden质控图,它是用低值、高值两种不同浓度的质控物,先分别联系检测20次,求出各自的均数和标准差,以标准差S为单位分别在纵坐标和横坐标表示。在2S处作与轴垂直的平行线,即可成方形的方框,并作对角线中央的中心点E,是两个质控物靶值的焦
47、点,由它确定了一个实验室处于理想条件下,两控制物的靶值交点。实验室每次两个控制品的测定结果,都会在图上标出一个这样的交点。将每批的结果按其在图中的位置标出,凡在方框内的为在允许范围之内;凡超出方框外的各点,为超出2S范围的点,为失控点。 不论质控物是高浓度或低浓度:标记点落在、以外的BC对角线附近,且表现为总是高或总是低的值,也就是持续偏高或偏低,即说明有系统误差。如仪器的性能问题、吸管加样不准等因素引起误差。标记点落在、以外的AD对角线附近,两个质控物浓度一个高,一个低则属于随机误差所致,如测定时的温度突然升高或降低,标本弄错等原因。,74,Youden质控图,系统误差,75,Youden质
48、控图,随机误差,76,Youden质控图优点,没有了复杂的统计学计算,两个质控物浓度由一个交点标记出来,图形简单明了,信息量大,非常直观的观察两个质控物的变化趋势,由此判断误差类型。,77,失控的处理,操作者如发现失控,应填写失控报告单,对失控的最佳处理是:确认问题的性质,是系统误差还是随机误差?下一步提出妥善的解决办法,消除失控的原因,并防止以后再次发生。多种因素可导致失控:操作失误,试剂、校准物、质控物失效,仪器维护不良,采用不适当的质控规则和太小的质控限范围,一个分析批测定的质控物数量不当等等。,78,失控原因分析和处理步骤:,1、检查控制图或失控规则,确定误差的类型。 在实践中规则13
49、S和R4S是检验控制值分布的尾部或分布的宽度,属于随机误 差,而且出现随机误差失控的表现常突然,图上反应的失控点相对于均值的 离散程度比往常都大。 而由22S,41S ,10X规则检出系统误差,在图上往往表现为控制值具有定向的 漂移,并且随时间在增大,最后形成失控。2、确定误差类型后,较易查找失控问题,并且解决。 试剂质量差,灵敏度低、特异性差 过期失效、贮存不当、室温放置太久 试剂不同批号,批间或批内的变异。 加样枪是否经过校正,加液量是否准确 试剂是否混匀、是否产生气泡 试剂配置及样本加样的量一定要严格遵守厂家规定 自动分析仪变温模块是否正常 用患者标本连做10次重复检测,了解分析仪针对真
50、实患者标本的批内精密度, 了解随机误差是否加大。,79,失控原因分析和处理步骤:,3.请专家帮助。 如果前面各步骤都未能得到“在控”结果,可能是更复杂的原因,实验室很难自己简单排除,此时可请技术专家帮助或与仪器、试剂厂家联系请求技术支援。实验室应记录此过程并至少保存两年。4、确认问题已解决,做好记录。 找出问题纠正后,重做所有控制品,以新检测的控制值恢复“在控”来确认失控问题已解决。事后,应将出现的失控事件和纠正过程形成文件,以备今后参考查阅。,80,失控后的不当做法:,、重做控制品 目前,绝大多数实验室对待失控的第一反应不是检查失控原因,而是重复检测控制品,这种做法已过时。 较好的做法应该是