质粒DNA的提取酶切及浓度检测.ppt

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1、实验5 质粒DNA的提取,质粒的概念,质粒:质粒是细菌染色体外的遗传物质,大小在1200kb之间,大多是具有双股闭合环状结构的DNA分子,通常以超螺旋状态存在于细胞浆中。,质粒提取目的,PCR的模板质粒作为克隆载体(研究目的基因时,常需要提取质粒),质粒提取的方法与原理,碱裂解法SDS裂解法煮沸裂解法氯化铯-溴化乙锭梯度离心法试剂盒法,碱裂解法溶液1 50mmol/L葡萄糖,10mmol/L EDTA,25mMTris-HCl pH8.0。溶液2 0.2mol/L NaOH,1%SDS溶液3 乙酸钾溶液(3M,pH=4.8):60mL的5mol/L KAc,11.5ml冰醋酸,28.5mL H

2、2O,培养细菌:将带有质粒的大肠杆菌接种到1.5-3ml含有相应抗生素的液体培养基,37培养1216小时;取液体培养液1.5-3ml于Eppendorf管中,10000r/min离心1min,去掉上清液,加入100l溶液1 充分混匀放置3-5分钟;加入200l新配制的0.2mol/L NaOH+1SDS(变性液),加盖颠倒3-5次使之混匀,冰上放置5min;,质粒小量提取的方法(手工提取):,加入150 l乙酸钾溶液(溶液III),加盖后颠倒3-5次混匀,冰上放置5min;用台式高速离心机,12000r/min离心15min,上清移入另一干净离心管,并加2倍 100乙醇混匀,12000r/mi

3、n离心5min,弃去上清液;沉淀用0.5ml 70乙醇清洗一次,12000r/min离心5min,弃去上清液,小管倒置于吸水纸上,除尽乙醇,室温自然干燥;加入30-50l含有20g/ml RNase的灭菌蒸馏水或TE 缓冲液溶解提取物,室温放置15-30min,使DNA充分溶解(有时需要酚:氯仿抽提);将分离出的质粒DNA置于-20保存备用。,注意:用移液器操作时,每一步都要格外小心,特别是在加入溶液II 和III后,一定不要剧烈振荡,以免切碎DNA(包括质粒DNA和基因组DNA)!,质粒小抽试剂盒,原理:把硅胶薄膜的优点与经典的碱-SDS裂解细菌细胞法结合起来。优点:操作简便、节约时间、性/

4、价比高。,使用者需备,10,000 xg以上高速离心机1.5ml的灭菌干净小离心管灭菌去离子水(或TE缓冲液)无水乙醇,注意,一、使用前往准备好的SolutionI中加入RNase A,二、浓缩的Wash Buffer需用乙醇稀释:三、稀释后的DNA Wash Buffer需室温保存;四、所有步骤必须在室温下操作。,实验操作步骤,增殖细菌、扩增质粒裂解菌体、获取质粒抽提质粒、分离纯化结果鉴定,对于未经酶切的质粒来说,常会出现两条电泳带 1)(松弛)螺旋状质粒DNA带 2)超螺旋状质粒DNA的带以超螺旋状质粒DNA居多,移动速度也最快。有时还会出现三条带,其中一条是因为有一些质粒DNA在提取过程

5、中遭到损伤而线性化,其移动速度介于螺旋状和超螺旋状质粒DNA之间。如果提取的质粒很好时,这条带会很弱,有时看不到。,质粒DNA提取范例:,质粒DNA的酶切鉴定,1.实验目的和要求学习和掌握限制性内切酶的特性、酶解操作方法,并理解限制性内切酶是DNA重组技术的关键工具。,2.相关基础知识 限制性核酸内切酶:是一类能识别双链DNA分子特异性核酸序列的DNA水解酶。是体外剪切基因片段的重要工具,所以常常与核酸聚合酶、连接酶以及末端修饰酶等一起称为工具酶。限制性核酸内切酶不仅是DNA重组中重要的工具,而且还可以用于基因组酶切图谱的鉴定。,1)限制性核酸内切酶的类型及特性按限制酶的组成、与修饰酶活性关系

6、以及切断核酸的情况不同,分为三类:型 型*型,II型 限制性内切酶 能识别专一的核苷酸顺序,并在该顺序内的固定位置上切割双链。由于这类限制性内切酶的识别和切割的核苷酸都是专一的。因此,这种限制性内切酶是DNA重组技术中最常用的工具酶之一。这种酶识别的专一核苷酸顺序最常见的是4个或6个核苷酸 II 型限制性内切酶的识别顺序是一个回文对称顺序,即有一个中心对称轴,从这个轴朝二个方向“读”都完全相同。,这种酶的切割可以有两种方式:粘性末端;是交错切割,结果形成两条单链末端,这种末端的核苷酸顺序是互补的,可形成氢键,所以称为粘性末端。如EcoRI的识别顺序为:5 GAA|TT_C 3 3 C_TT|A

7、AG 5垂直线表示中心对称轴,从两侧“读”核苷酸顺序都是GAATTC或CTTAAG,这就是回文顺序(palindrome)。_和表示在双链上交错切割的位置,II型酶切割方式的另一种是在同一位置上切割双链,产生平头末端。例如EcoRV 的识别位置是:5 GAT|ATC 33 CTA|TAG 5 这种末端同样可以通过DNA连接酶连接起来。,平头末端:,2)影响核酸限制性内切酶活性的因素(1)DNA的纯度;(2)DNA的甲基化程度;(3)酶切消化反应的温度;(4)DNA的分子结构;(5)溶液中离子浓度及种类;(6)缓冲液的 pH值。,3.实验材料与仪器质粒 标准分子量片段(DNA Ladder)Ec

8、oRI 和 Hind 核酸内切酶(Takara)EcoRI和 Hind 酶解缓冲液(10M buffer)琼脂糖,TBE或TAE缓冲液(10)溴化乙啶染色液(10mg/ml)上样液(6):0.25%溴酚兰,40(W/V)蔗糖 水溶液。,缓冲液 因为不同的酶所要求的最适反应条件不同,所以一定要使用与酶相匹配的缓冲系统。一般按照销售酶的公司所提供的相应缓冲液。双酶切或多酶切时要考虑相容性缓冲液问题,一般公司会给用户提供这方面的信息。,EcoR I 酶切位点:GAATTCHind 酶切位点:AAGGCT,*缓冲液随不同的酶而不同,本实验用 M buffer。,置于37水浴酶解0.5-1小时。酶解完成后,分别加入3l的上样缓冲液,然后进行电泳分析。,1)质粒DNA的酶解,4.实验方法和步骤,实验结果,未酶切质粒;2.EcoRI 单酶切;3.EcoR1+Hind 双酶切M.DNA Marker.,

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