分子克隆实验设计.ppt

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1、分子克隆实验原理,分子克隆实验原理,一、菌种保存和活化二、质粒提取和保存三、感受态细胞的制备四、载体的制备五、基因的制备六、连接七、转化八、重组克隆的筛选,菌种保存和活化,一.甘油菌保存:1、100 ul菌液100 ul灭菌甘油【混匀】2、多制备几管,做上标记【菌名,质粒,时间】3、20 可保存半年;【80 可长期保存】二、甘油菌活化:1、取一管甘油菌,混匀;2、用接种针接种并在培养平板上划线;3、37 倒置培养12 h;4、挑单克隆于2.5ml LB(视情况加抗生素),37 振荡培养12 h.【注明:甘油菌用完后,最好扔掉,反复冻融易死亡。】,质粒的提取原理碱裂解法,三种溶液:溶液1:50

2、m mol/l 葡萄糖-维持渗透压,防止DNA受机械损伤降解;25 m mol/l Tri Cl(pH 8.0)-维持 pH;10 m mol/l EDTA(pH 8.0)-螯合Ca2+,DNase 失活,保护DNA溶液2:0.2 mol/NaOH-核酸变性(pH12或pH3)(解链)1%SDS-蛋白变性,裂解细胞。溶液3:7.5 mol/L NH4AC(pH 7.6)-沉淀蛋白,大分子核酸,调节pH,使小分子核酸复性(可溶)。其它溶液:(1)2M NH4AC-沉淀蛋白,溶解核酸;(2)异丙醇-沉淀质粒(3)70乙醇-沉淀质粒,除去异丙醇,盐分。(4)RNase-除去细菌RNA,质粒的提取原理

3、碱裂解法,Protocal:1.5 ml 菌液,12000 rpm*1 min,弃上清(repeat)收集细菌 溶液1(200 ul),剧烈混匀提供缓冲液溶液2(400 ul),温柔混匀,冰中5 min;裂解细胞,蛋白核酸变性溶液3(300 ul),温柔混匀,冰中10 min;质粒复性13000 rpm*5 min,取上清;除去细菌蛋白,基因DNA540 ul 异丙醇,室温 10 min;沉淀质粒14000 rpm*10 min,弃上清;除去可溶性杂质100 ul 2M NH4AC13000 rpm*5 min,取上清;100 ul 异丙醇,室温10 min;14000 rpm*10 min,

4、弃上清;70%乙醇500 ul,14000 rpm*10 min,弃上清;除去异丙醇,盐分烘干10-30 min,除去乙醇50 ul ddH2O(含0.1 mg/ml RNase),37C*30 min.除去细菌RNA电泳鉴定,初抽,精抽,除去少量杂质蛋白,质粒的保存,1.ddH2O(可含EDTA)中可短期保存 4 保存1月;-20 可保存一年 2.75%乙醇可长期保存.3.烘干可长期保存(可能难溶),感受态细胞的制备,1.菌种活化2.取0.5ml菌液至50ml LB培养液中;3、37,振荡培养2h至对数期;4、转至50 ml无菌塑料管,0*10 min;5、5000 rpm*10 min*4

5、 6、取沉淀,加25ml 50mM CaCl2【0,无菌】7、5000 rpm*10 min*4 8、取沉淀,加 2 ml 含15甘油的50 mM CaCl2重悬,200 ul/tube分装,液氮速冻后至80 冰箱保存(半年有效)。【注意:(1)需要做一个无质粒的对照(2)并用已知质粒转化,鉴定感受态细胞的转化效率大约106【1ug PUC 质粒,产生克隆106】,载体的制备,1、酶切(放大体积100 ul,要充分)2、胶回收(注意远紫外照射时间不能太长,防止DNA突变)3、纯度,浓度测定。(电泳测定),基因的制备(*),1、PCR扩增2.酶切3、胶回收4、纯度,浓度测定,连接,1、总体积为1

6、0 ul;2、16 连接过夜;3、基因mol/载体mol 10;【平端 15】,转化,1、连接产物 5 ul加入感受态细胞中;2、混匀,冰上30min-cell 吸附DNA3、42,90 s热击,促进DNA进入cell4、冰上12min使细胞复原5、加1ml LB(无 Amp)外源DNA还未表达6、37 培养1hAmp抗性基因表达7、6000rpm*30s,浓缩100ul8、涂板(Amp板)抗性筛选9、37 培养过夜。,重组克隆的筛选*,1、抗性筛选;2、蓝白斑筛选;3、酶切电泳筛选(*);4、PCR筛选;5、测序验证;6、表达筛选;7、生物活性筛选。,抗性筛选-质粒载体携带的筛选标记,1.A

7、mpR(氨苄青霉素抗性)2、TetR(四环素抗性)3、KanR(卡那霉素抗性)特点:一般用抗性培养基做初级筛选,只能保证有载体转入,不能保证外源基因插入。,克隆的Amp抗性筛选,蓝白斑筛选半乳糖苷酶(Lac Z)的显色反应,一、互补:LacZ由4个亚基构成;细菌表达一部分(无活性),载体表达一部分(无活性),合在一起构成有活性的LacZ,可分解培养基平板中的底物X-gal,生成蓝色物质。(需要IPTG诱导表达)蓝斑;二、外源基因插入载体后,使载体部分LacZ失活,无法进行互补白斑。()三、特点:1、未转入载体的细菌也会形成白斑,需同时用抗性筛选;2、无法确定基因插入的方向;3、特殊:基因过小,

8、且读框正确,可能无法使载体部分LacZ失活,将产生互补,产生蓝斑。,酶切电泳筛选(*),一、选用不同的酶切组合,通过电泳检测DNA片断的大小。二、特点:1、可鉴定外源基因的重组和插入方向。2、结果可靠但操作比较麻烦;3、无法检测基因内部的突变。,EcoR1和Xho1双酶切筛选,PCR筛选,1、通过特异引物扩增,电泳检测,筛选重组质粒。二、特点:1、可用2ul菌液做模板,快速,方便,可批量检测。2、不能检测基因插入方向3、不能检测基因内部突变。,测序验证,一、选取阳性克隆,送公司测序;二、特点:1、最可靠的检测方法。可确定基因的重组,插入的方向,基因内部的突变等。2、价格贵,适于12个克隆的验证

9、。,1、一次测序反应一般准确测定500bp左右(也有测准800bp,价格贵)60元左右。2、测定的序列靠近引物(起点)2030bp不准,500bp后的序列也不准。3、(1)质粒测序:测序引物公司提供(2)PCR产物直接测序:测序引物自己提供,理论上比质粒测序更可靠。注意:A.测序引物必须与模板完全配对;含有mix碱基的引物一般不能测序;B.测序引物长度一般为20个碱基左右,GC含量必须在5060%左右。,测序验证,表达筛选,一、SDS-PAGE筛选;二、亲和筛选;三、免疫筛选;,SDS-PAGE筛选,1、小量诱导表达;2、全菌液裂解后进行SDS-PAGE电泳;3、重组的表达克隆将在特定的位置出

10、现较浓的蛋白条带。(需加不诱导的对照)特点:1、可检测外源基因的表达。(一般基因的插入,方向,读框都正确)2、无法筛选不能有效表达的重组质粒。,亲和筛选,1.50 ml菌液诱导表达,2、超声破菌,3、用少量亲和beads吸附上清;4、SDS-PAGE检测,在特点位点将出现一条蛋白带。特点:1、适用于有亲和Taq的融合蛋白的检测;2、比SDS-PAGE筛选更灵敏(富集),可靠;3、比较麻烦。,免疫筛选,用抗体检测目标蛋白:Western blot(最准确)ELISA(可能会受到交叉反应的干扰),生物活性筛选,酶:测定酶活;亲和蛋白:与亲和底物作用。其它的生物活性。,分子克隆流程,1、分析基因,载体特点;2、设计克隆策略;3、检测基因,载体的正确性;4、制备感受态细胞,目的基因,载体;5、连接,转化。6、筛选克隆(1)Amp抗性初筛;(2)PCR筛选(或酶切筛选);(3)表达筛选(SDS-PAGE和亲和筛选);(4)测序验证(5)生物活性筛选。,

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